Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте
Збережено в:
Дата: | 2005 |
---|---|
Автори: | , |
Формат: | Стаття |
Мова: | Russian |
Опубліковано: |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України
2005
|
Назва видання: | Проблемы криобиологии и криомедицины |
Теми: | |
Онлайн доступ: | http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/138501 |
Теги: |
Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
|
Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
Цитувати: | Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте / Л.А. Водопьянова, Г.Ф. Жегунов // Проблемы криобиологии. — 2005. — Т. 15, № 3. — С. 581–586. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. |
Репозитарії
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraineid |
irk-123456789-138501 |
---|---|
record_format |
dspace |
spelling |
irk-123456789-1385012018-06-20T03:04:23Z Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте Водопьянова, Л.А. Жегунов, Г.Ф. Биологические особенности криоконсервированных клеток крови и их применение в медицине 2005 Article Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте / Л.А. Водопьянова, Г.Ф. Жегунов // Проблемы криобиологии. — 2005. — Т. 15, № 3. — С. 581–586. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. 0233-7673 http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/138501 636.7:611.018.46:577.3 ru Проблемы криобиологии и криомедицины Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
collection |
DSpace DC |
language |
Russian |
topic |
Биологические особенности криоконсервированных клеток крови и их применение в медицине Биологические особенности криоконсервированных клеток крови и их применение в медицине |
spellingShingle |
Биологические особенности криоконсервированных клеток крови и их применение в медицине Биологические особенности криоконсервированных клеток крови и их применение в медицине Водопьянова, Л.А. Жегунов, Г.Ф. Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте Проблемы криобиологии и криомедицины |
format |
Article |
author |
Водопьянова, Л.А. Жегунов, Г.Ф. |
author_facet |
Водопьянова, Л.А. Жегунов, Г.Ф. |
author_sort |
Водопьянова, Л.А. |
title |
Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте |
title_short |
Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте |
title_full |
Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте |
title_fullStr |
Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте |
title_full_unstemmed |
Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте |
title_sort |
цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте |
publisher |
Інститут проблем кріобіології і кріомедицини НАН України |
publishDate |
2005 |
topic_facet |
Биологические особенности криоконсервированных клеток крови и их применение в медицине |
url |
http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/138501 |
citation_txt |
Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте / Л.А. Водопьянова, Г.Ф. Жегунов // Проблемы криобиологии. — 2005. — Т. 15, № 3. — С. 581–586. — Бібліогр.: 12 назв. — рос. |
series |
Проблемы криобиологии и криомедицины |
work_keys_str_mv |
AT vodopʹânovala citohimičeskoevyâvleniefosfolipidovvgematopoétičeskihkletkahkostnogomozgasobakposlezamoraživaniâvžidkomazote AT žegunovgf citohimičeskoevyâvleniefosfolipidovvgematopoétičeskihkletkahkostnogomozgasobakposlezamoraživaniâvžidkomazote |
first_indexed |
2025-07-10T05:55:22Z |
last_indexed |
2025-07-10T05:55:22Z |
_version_ |
1837238248882044928 |
fulltext |
581ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 15, 2005, №3
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 15, 2005, №3
УДК 636.7:611.018.46:577.3
Цитохимическое выявление фосфолипидов в гематопоэтических
клетках костного мозга собак после замораживания в жидком азоте
Л.А. ВОДОПЬЯНОВА, Г.Ф. ЖЕГУНОВ
Харьковская государственная зооветеринарная академия
Адрес для корреспонденции: Водопьянова Л.А. Харьковская
государственая зооветеринарная академия, пгт. Малая Даниловка,
Харьковская обл., Украина 62341
Среди различных методов исследования клеток
костного мозга особое место занимают цитохи-
мические, которые сочетают чувствительность
биохимических методов с наглядностью цито-
логических. Они позволяют выявить клеточную
разнородность и изменения цитохимического
спектра, так липиды в элементах лимфопоэза в
норме не выявляются ни на одной стадии
клеточного созревания [1, 4], поэтому некоторые
ученые использовали в своих экспериментах
окраску суданом черным для идентификации
клеток лимфопоэза от недифференцированных
бластных клеток [8].
Цитохимическое изучение содержания фосфо-
липидов в элементах гемопоэза позволит получить
ряд данных, важных для понимания мета-
болических особенностей кроветворных клеток,
подверженных действию криопротекторов и
низких температур (–196°С).
Целью исследования являлось цитохимическое
выявление и оценка содержания фосфолипидов в
клетках костного мозга собак после замора-
живания-отогрева. В частности, предлагалось
цитохимически оценить содержание фосфолипидов
после действия криопротекторов, а также исследо-
вать показатели фосфолипидов после замора-
живания без применения криопротекторов, и после
замораживания под защитой различных концен-
траций ДМСО, ПЭО-400, глицерина.
Материалы и методы
Объектом исследования служил костный мозг
половозрелых собак (3-4 летние самцы, массой
5-10 кг). Для получения клеток костного мозга за
основу бралась методика [10, 11].
Конечная концентрация ДМСО при добавлении к
суспензии костного мозга была 10, 7, 5% , ПЭО-400 –
10, 15, 20% , глицерина – 10, 20, 30%. Инкубация с
растворами ДМСО проводилась 10 минут, ПЭО-400
и глицерином 30 минут в условиях 4°С.
Замораживание клеток костного мозга проводи-
ли в микротюбиках («Еppendorf», Spektar) по
методикам [9, 12].
Фосфолипиды в клетках костного мозга собак
окрашивали по методике [4, 6]. После действия
криопротектора время окраски мазка сокращали
[5]. Показатели интенсивности реакции выражали
с помощью СГК (среднего гистохимического
коэффициента) вычисляемого по формуле:
СКГ= 100
3210 cba +++
,
где цифры 3, 2, 1 и 0 – степени интенсивности
окраски, а буквы – число клеток с той или иной ин-
тенсивностью реакции. Цифра 100 в знаменателе –
число подсчитанных клеток. СГК дает значитель-
но больше информации по сравнению с подсчетом
процентного содержания положительно реагирую-
щих клеток [5].
Пробы изучали в световом микроскопе (10×100,
ZEISS, Germany) с камерой (Microocular for PC
connection).
Эксперименты проведены в соответствии с
«Общими принципами экспериментов на живот-
ных», одобренными I Национальным конгрессом
по биоэтике (Киев, 2001).
Результаты и обсуждение
Инкубация клеток костного мозга собак с
растворами криопротекторов снижает содержание
фосфолипидов в клетках, особенно в клетках
эритроцитарного ряда, изначально характе-
ризующихся невысоким содержанием фосфо-
липидов (табл. 1). Причем, чем выше концентрация
криопротекторов, тем ниже СГК. В большей
степени это выражено в клетках костного мозга
после инкубации с растворами ДМСО. А в клетках,
инкубированных с растворами глицерина, СГК
наиболее близок к показателям в нативных клетках
(табл. 2-4).
Показано, что процесс замораживания-отогрева
без криопротектора оказывается очень небла-
гоприятным для клеток костного мозга собак.
После указанного воздействия, содержание
фосфолипидов в клетках значительно сокра-
щается. В меньшей степени этот процесс выражен
в недифференцированных бластах (табл. 1).
В клетках эритроцитарного ряда содержится
небольшое количество фосфолипидов. Их роль
берет на себя холестерол [1, 7]. В данных клетках
после замораживания в жидком азоте, даже под
защитой криопротекторов, не сохранились фосфо-
липиды в количестве, достаточном для опре-
деления цитохимическими методами.
582ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 15, 2005, №3
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 15, 2005, №3
Таблица 1. Показатели СГК фосфолипидов в мазках из суспензии костного мозга собак (самцов 3-4 лет)
до и после замораживания в жидком азоте без применения криопротекторов
ыммарголеимьлетазакоП витаН ароткеторпоиркзебеинавижаромаЗ
)ьлортнок(
иктелкеынрялукитеР 350,0±347,0 110,0±523,0
ытсалбеыннаворицнереффидеН 570,0±689,1 680,0±436,1
ытсалболеиМ 920,0±348,1 880,0±689,0
ытицолеиморП 760,0±688,1 620,0±189,0
ытицолеиМ 120,0±859,1 360,0±109,0
ытицолеиматеМ 690,0±833,2 450,0±426,0
еынредяокчолаП 180,0±498,2 -
еынредяотнемгеС 990,0±898,2 -
дярйынратицоноМ 810,0±552,1 -
дярйынратицофмиЛ 0 -
игафоркаМ 170,0±212,1 -
дярйынратицоиракагеМ 270,0±396,1 -
ытицомронорП 810,0±185,0 -
еыньлифозабытицомроН 910,0±085,0 -
еыньлифотаморхилопытицомроН 150,0±855,0 -
еыньлифискоытицомроН 710,0±253,0 -
ытицортирэеыньлифотаморхилоП 100,0±570,0 -
Примечание: “–” – отсутствие клеток.
Глицерин во всех использованных концен-
трациях был малоэффективен (табл. 4). Лучше
показатели СГК были в клетках, криокон-
сервированных с ПЭО-400 (табл. 3). ДМСО
оказался наиболее эффективным из примененных
криопротекторов. Так, 7%-й раствор ДМСО оказал
лучшие защитные свойства. Под его защитой в
ретикулярных клетках, недифференцированных
бластах, миелобластах, промиелоцитах, миело-
цитах, палочкоядерных клетках и клетках моноци-
тарного ряда значение СГК было наиболее
высоким. Схожие данные у ДМСО 10%. А
сегментоядерные клетки и макрофаги только
после замораживания с 7, 10%-м ДМСО сохраняли
цитохимически определимое количество фосфо-
липидов (табл. 2).
Скорее всего причиной снижения количества
фосфолипидов является перекисное окисление
липидов (ПОЛ). Известно, что при разных
воздействиях на клетку (в том числе и действии
583ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 15, 2005, №3
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 15, 2005, №3
ыммарголеимьлетазакоП
%5ОСМД %7ОСМД %01ОСМД %5ОСМД %7ОСМД %01ОСМД
яинавижаромаззеБ яинавижаромазелсоП
иктелкеынрялукитеР 10,0±807,0 320,0±407,0 430,0±986,0 660,0±495,0 20,0±486,0 910,0±286,0
ытсалбеыннаворицнереффидеН 930,0±8,1 320,0±008,1 960,0±687,1 130,0±107,1 380,0±137,1 140,0±327,1
ытсалболеиМ 180,0±25,1 800,0±15,1 840,0±805,1 260,0±182,1 240,0±483,1 570,0±303,1
ытицолеиморП 330,0±6,1 880,0±895,1 670,0±585,1 900,0±1 750,0±503,1 680,0±382,1
ытицолеиМ 960,0±584,1 820,0±314,1 690,0±104,1 160,0±581,1 570,0±481,1 980,0±561,1
ытицолеиматеМ 680,0±179,1 630,0±469,1 460,0±139,1 750,0±801,1 280,0±627,1 280,0±627,1
еынредяокчолаП 850,0±689,1 380,0±597,1 670,0±317,1 200,0±259,0 150,0±530,1 660,0±230,1
еынредяотнемгеС 50,0±959,1 140,0±239,1 550,0±618,1 - 670,0±800,1 550,0±100,1
дярйынратицоноМ 240,0±139,0 390,0±109,0 960,0±418,0 100,0±136,0 420,0±688,0 750,0±497,0
дярйынратицофмиЛ 0 0 0 0 0 0
игафоркаМ 560,0±819,0 360,0±408,0 660,0±857,0 - 220,0±687,0 580,0±647,0
дярйынратицоиракагеМ 670,0±619,0 940,0±248,0 530,0±108,0 - - -
ытицомронорП 400,0±541,0 500,0±201,0 310,0±350,0 0 0 0
еыньлифозабытицомроН 400,0±211,0 0 0 0 0 0
ытицомроН
еыньлифотаморхилоп 200,0±850,0 0 0 0 0 0
еыньлифискоытицомроН 0 0 0 0 0 0
еыньлифотаморхилоП
ытицортирэ 0 0 0 0 0 0
Таблица 2. Показатели СГК фосфолипидов в мазках из суспензии костного мозга собак (самцов 3-4 лет)
после действия криопротектора ДМСО без замораживания и после замораживания в жидком азоте с
применением в качестве криопротектора растворов ДМСО
растворов криопротекторов, замораживания)
усиливается перекисное окисление фосфолипидов
[3]. Таким образом, содержание фосфолипидов
снижается уже после инкубации с криопротектором
и чем токсичнее криопротектор и выше его
концентрация, тем интенсивнее идет окисление
фосфолипидов. В биохимических реакциях
перекиси липидов выступают как активные
окислители. Они повреждают клеточные мемб-
раны и органеллы. Процессы ПОЛ особенно
активно протекают в структурах, содержащих
катализаторы ПОЛ – Fe-содержащие белки
(цитохромы) [3]. Как результат, повреждающее
действие перекисей на митохондрии выражено в
584ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 15, 2005, №3
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 15, 2005, №3
ыммарголеимьлетазакоП
004-ОЭП
%01
004-ОЭП
%51
004-ОЭП
%02
004-ОЭП
%01
004-ОЭП
%51
004-ОЭП
%02
яинавижаромаззеБ яинавижаромазелсоП
иктелкеынрялукитеР 380,0±127,0 720,0±27,0 310,0±917,0 410,0±86,0 300,0±806,0 130,0±525,0
ытсалбеыннаворицнереффидеН 180,0±618,1 390,0±318,1 380,0±508,1 840,0±27,1 120,0±817,1 880,0±556,1
ытсалболеиМ 450,0±536,1 660,0±536,1 610,0±425,1 180,0±3,1 490,0±492,1 910,0±100,1
ытицолеиморП 140,0±816,1 610,0±716,1 560,0±106,1 590,0±672,1 320,0±102,1 930,0±489,0
ытицолеиМ 920,0±216,1 920,0±495,1 90,0±894,1 450,0±531,1 880,0±672,1 650,0±329,0
ытицолеиматеМ 880,0±140,2 480,0±40,2 430,0±579,1 270,0±527,1 640,0±131,1 900,0±600,1
еынредяокчолаП 550,0±813,2 780,0±313,2 270,0±889,1 201,0±120,1 980,0±989,0 400,0±109,0
еынредяотнемгеС 670,0±180,2 290,0±589,1 630,0±69,1 - - -
дярйынратицоноМ 580,0±520,1 110,0±1 120,0±139,0 760,0±887,0 960,0±587,0 0
дярйынратицофмиЛ 0 0 0 0 0 0
игафоркаМ 220,0±510,1 600,0±1 820,0±529,0 - - -
дярйынратицоиракагеМ 20,0±142,1 910,0±811,1 610,0±619,0 - - -
ытицомронорП 960,0±304,0 170,0±833,0 330,0±813,0 0 0 0
еыньлифозабытицомроН 710,0±804,0 980,0±283,0 10,0±803,0 0 0 0
ытицомроН
еыньлифотаморхилоп 430,0±273,0 120,0±463,0 940,0±503,0 0 0 0
еыньлифискоытицомроН 0 0 0 0 - -
еыньлифотаморхилоП
ытицортирэ 0 0 0 0 - -
Таблица 3. Показатели СГК фосфолипидов в мазках из суспензии костного мозга собак (самцов 3-4 лет)
после действия криопротектора ПЭО-400 без замораживания и после замораживания в жидком азоте с
применением в качестве криопротектора растворов ПЭО-400
большей степени, чем на лизосомы, тем самым,
нарушая энергетический баланс в клетке [7].
Выводы
Таким образом, криопротекторы и процесс
замораживания-отогрева оказывает отрица-
тельный эффект на фосфолипиды мембран, что
может быть причиной нарушения барьерно-
транспортных свойств мембран клеток.
Замораживание-отогрев приводит к снижению
количества фосфолипидов в клетках костного мозга
собак.
Инкубация клеток костного мозга собак с
растворами криопротекторов приводит к снижению
содержания фосфолипидов в клетках.
В недифферинцированных клетках костного
мозга, замороженных без защиты криопро-
текторов, ПОЛ фосфолипидов выражены меньше
585ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 15, 2005, №3
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 15, 2005, №3
Таблица 4. Показатели СГК фосфолипидов в мазках из суспензии костного мозга собак (самцов 3-4 лет)
после действия криопротектора глицерина без замораживания и после замораживания в жидком азоте с
применением в качестве криопротектора растворов глицерина
ыммарголеимьлетазакоП
нирецилГ
%01
нирецилГ
%02
нирецилГ
%03
нирецилГ
%01
нирецилГ
%02
нирецилГ
%03
яинавижаромаззеБ яинавижаромазелсоП
иктелкеынрялукитеР 460,0±47,0 530,0±837,0 400,0±217,0 130,0±295,0 780,0±195,0 660,0±495,0
ытсалбеыннаворицнереффидеН 350,0±389,1 13,0±289,1 280,0±597,1 470,0±996,1 190,0±7,1 130,0±107,1
ытсалболеиМ 050,0±48,1 550,0±48,1 740,0±805,1 180,0±502,1 830,0±532,1 260,0±182,1
ытицолеиморП 640,0±88,1 440,0±468,1 420,0±685,1 980,0±299,0 230,0±499,0 900,0±1
ытицолеиМ 880,0±259,1 780,0±698,1 970,0±304,1 620,0±579,0 910,0±1 160,0±581,1
ытицолеиматеМ 550,0±233,2 440,0±471,2 590,0±259,1 930,0±361,1 980,0±711,1 750,0±801,1
еынредяокчолаП 130,0±988,2 830,0±185,2 980,0±867,1 850,0±529,0 160,0±339,0 200,0±259,0
еынредяотнемгеС 250,0±787,2 760,0±783,2 170,0±209,1 - - -
дярйынратицоноМ 940,0±152,1 180,0±832,1 150,0±378,0 520,0±106,0 500,0±226,0 100,0±136,0
дярйынратицофмиЛ 0 0 0 0 0 0
игафоркаМ 980,0±212,1 190,0±312,1 180,0±108,0 - - -
дярйынратицоиракагеМ 160,0±286,1 710,0±645,1 170,0±528,0 - - -
ытицомронорП 540,0±185,0 300,0±814,0 800,0±1,0 0 0 0
еыньлифозабытицомроН 560,0±344,0 830,0±901,0 200,0±201,0 0 0 0
ытицомроН
еыньлифотаморхилоп 820,0±134,0 800,0±180,0 0 0 0 0
еыньлифискоытицомроН 0 0 0 0 0 -
еыньлифотаморхилоП
ытицортирэ 0 0 0 0 0 0
Литература
Абрамов Г. Гематологический атлас.– М.: Медицина,
1985.– 344с.
Белоус А.М., Грищенко В.И. Криобиология.– Киев.
Наукова думка, 1994.– 430с.
Методы биохимических исследований (липидный и
энергетический обмен). Учебное пособие/ Под ред. М.И.
Прохоровой.– Л., 1982.– 272с.
Цитохимия и электронная микроскопия клеток крови и
кроветворных органов / В.Г. Пинчук.– Киев: Наукова
думка, 1974.– 248с.
1.
2.
3.
4.
чем в других гематопоэтических клетках.
Из криопротекторов наиболее эффективным
оказался 7, 10%-й ДМСО, после криоконсервиро-
вания с этими растворами показатели содержания
фосфолипидов были наиболее высокие.
586ПРОБЛЕМЫ
КРИОБИОЛОГИИ
Т. 15, 2005, №3
PROBLEMS
OF CRYOBIOLOGY
Vol. 15, 2005, №3
Цитохимия костного мозга при криоконсервировании:
Атлас/ Обозная Э.И., Панков Е.Я.– Киев: Наукова думка,
1989.– 256 с.
Энергетика биологических мембран/В. П. Скулачев.– М.:
Наука, 1989.– 564 с.
Янович В.Г., Лагодюк П.З. Обмен липидов у животных в
онтогенезе.– М.: Агропромиздат, 1991.– 317с.
Guo Z. K., Yang J. Q., Liu X. D. et al. Biological features of
mesenchimal stem cells from human bone marrow // Clin.
Med. J.– 2001.– Vol. 114, N9.– P. 950-953.
Kawano Y., Lee C.L., Watanabe T. et al. Cryopreservation
of mobilized blood stem cells concentration without the use of a
programmed freezer // Ann. Hematol.– 2004.– Vol.83, N1.– P. 50-54.
Kushida T., Inaba M., Ikebukuro K. et al. A new method for bone
marrow harvesting // Stem Cells.– 2000.– Vol. 18, N6.– P. 453-456.
Kushida T., Inaba M., Ikebukuro K. et al. Comparison of
bone marrow cells harvested from various bones of
cynomolgus monkeys at various ages by perfusion or
aspiration methods: a preclinical study for human BMT //
Stem Cells.– 2002.– Vol. 20.– P. 155-162.
Stiff P.J., Murgo A.J., Zaroulis C.G. et al. Ulfractionated human
marrow cell cryopreservation usin dimethylsuifoxide and
hydroxyethyl starch // Cryobiology.– 1983.– Vol.20, N1.–
P. 17-24.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
|