Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях

Описан простой и хорошо воспроизводимый метод окрашивания тРНК и гомополирибонуклеотидов серебром в денатурирующих ПААГ, чувствительность которого на три порядка превышает таковую при окрашивании этих полинуклеотидов метиленовым синим. Предложенный способ позволяет избирательно окрашивать серебром н...

Повний опис

Збережено в:
Бібліографічні деталі
Дата:1990
Автори: Назаренко, И.А., Мацкова, Л.В.
Формат: Стаття
Мова:Russian
Опубліковано: Інститут молекулярної біології і генетики НАН України 1990
Назва видання:Биополимеры и клетка
Теми:
Онлайн доступ:http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/153689
Теги: Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
Назва журналу:Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
Цитувати:Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях / И.А. Назаренко, Л.В. Мацкова // Биополимеры и клетка. — 1990. — Т. 6, № 4. — С. 75-79. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.

Репозитарії

Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
id irk-123456789-153689
record_format dspace
spelling irk-123456789-1536892019-06-15T01:31:10Z Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях Назаренко, И.А. Мацкова, Л.В. Структура и функции биополимеров Описан простой и хорошо воспроизводимый метод окрашивания тРНК и гомополирибонуклеотидов серебром в денатурирующих ПААГ, чувствительность которого на три порядка превышает таковую при окрашивании этих полинуклеотидов метиленовым синим. Предложенный способ позволяет избирательно окрашивать серебром нуклеиновые кислоты в присутствии примесей белков. Исследована зависимость эффективности окрашивания полинуклеотидов и цвета образовавшихся комплексов от нуклеотидного состава. Так, поли(G) и поли(I) окрашиваются наиболее ярко, тогда как поли(U) демонстрирует негативное окрашивание. Описано простий і добре відтворюваний метод фарбування тРНК і гомополірибонуклеотидів сріблом у денатуруючих ПААГ, чутливість якого на три порядки перевищує таку при фарбуванні цих полінуклеотидів метиленовим синім. Запропонований спосіб дозволяє вибірково забарвлювати сріблом нуклеїнові кислоти за присутності домішок білків. Досліджено залежність ефективності фарбування полінуклеотидів і кольору утворюваних комплексів від нуклеотидного складу. Так, полі (G) і полі (I) забарвлюються найяскравіше, тоді як полі (U) демонструє негативне фарбування. A simple and reliable method for silver staining of RNA and homopolyribonucleotides after electrophoresis in PAAG, containing 7M of urea, is described. The sensitivity of the method is by three orders of magnitude higher than that of the staining with methylene blue. RNA-silver complex formation is shown to be dependent on the composition of polyribonucleotides. Thus, maximum sensitivity of the method is observed with poly (G) and poly (I), while poly (U) demonstrates negative staining. 1990 Article Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях / И.А. Назаренко, Л.В. Мацкова // Биополимеры и клетка. — 1990. — Т. 6, № 4. — С. 75-79. — Бібліогр.: 15 назв. — рос. 0233-7657 DOI: http://dx.doi.org/10.7124/bc.000281 http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/153689 577.113.4 ru Биополимеры и клетка Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
institution Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
collection DSpace DC
language Russian
topic Структура и функции биополимеров
Структура и функции биополимеров
spellingShingle Структура и функции биополимеров
Структура и функции биополимеров
Назаренко, И.А.
Мацкова, Л.В.
Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях
Биополимеры и клетка
description Описан простой и хорошо воспроизводимый метод окрашивания тРНК и гомополирибонуклеотидов серебром в денатурирующих ПААГ, чувствительность которого на три порядка превышает таковую при окрашивании этих полинуклеотидов метиленовым синим. Предложенный способ позволяет избирательно окрашивать серебром нуклеиновые кислоты в присутствии примесей белков. Исследована зависимость эффективности окрашивания полинуклеотидов и цвета образовавшихся комплексов от нуклеотидного состава. Так, поли(G) и поли(I) окрашиваются наиболее ярко, тогда как поли(U) демонстрирует негативное окрашивание.
format Article
author Назаренко, И.А.
Мацкова, Л.В.
author_facet Назаренко, И.А.
Мацкова, Л.В.
author_sort Назаренко, И.А.
title Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях
title_short Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях
title_full Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях
title_fullStr Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях
title_full_unstemmed Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях
title_sort влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях
publisher Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
publishDate 1990
topic_facet Структура и функции биополимеров
url http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/153689
citation_txt Влияние нуклеотидного состава полирибонуклеотидов на окрашивание серебром в полиакриламидных гелях / И.А. Назаренко, Л.В. Мацкова // Биополимеры и клетка. — 1990. — Т. 6, № 4. — С. 75-79. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.
series Биополимеры и клетка
work_keys_str_mv AT nazarenkoia vliânienukleotidnogosostavapoliribonukleotidovnaokrašivanieserebromvpoliakrilamidnyhgelâh
AT mackovalv vliânienukleotidnogosostavapoliribonukleotidovnaokrašivanieserebromvpoliakrilamidnyhgelâh
first_indexed 2025-07-14T05:10:14Z
last_indexed 2025-07-14T05:10:14Z
_version_ 1837597799314620416
fulltext 5. Альбертсон П. О. Разделение клеточных частиц и макромолекул. — М. : Мир, 1974.— 381 с. 6. Бабаян Т. JI., Безруков М. Г. Метаболиты-индукторы автолиза дрожжей // Acta bio- technol. — 1985. — 5, № 3. — С. 279—284. 7. Спирин А. С. Спектрофотометрическое определение суммарного количества нуклеино- вых кислот / / Биохимия. — 1958. — 23, № 5. — С. 656—662. 8. Schwenke К. D.,Prahl L. Functional properties of plant proteins / / Die Nahrung. — 1981. —25. N 1.—P. 59—69. 9. Krumphanzl V., Rehacek Z. Modern biotechnology.—Paris: UNESCO, 1984.—527 p. 10. Sergeev V. A., Solosenko V. MBezrucov M. G. Vergleichscharacteristik von Isolaten der Gesamteiweibe der Hefe in Abhangigkeit von den Bedingungen ihrer Abschei- ding / / Acta Biotechnol. — 1984. — 4, N 2. — S. 105—115. 11. Шабарова 3. Α., Богданов Α. Α. Химия нуклеиновых кислот и их компонентов. — М. : Химия, 1978.— 584 с. 12. MeCormiek D. В. Interactions of flavins with aminoacid r e s idues / /Pho tochem. and Photobiol. — 1974. —261, N 15. — P. 169—182. ВНИИсинтезбелок, Москва Получено 25.08.89 УДК 577.113.4 © И. А. Назаренко, Л. В. Мацкова, 1990 ВЛИЯНИЕ НУКЛЕОТИДНОГО СОСТАВА ПОЛИРИБОНУКЛЕОТИДОВ НА ОКРАШИВАНИЕ СЕРЕБРОМ В ПОЛИАКРИЛАМИДНЫХ ГЕЛЯХ Описан простой и хорошо воспроизводимый метод окрашивания тРНК и гомополири- бонуклеотидов серебром в денатурирующих ПААГ, чувствительность которого на три порядка превышает таковую при окрашивании этих по лину кле от ид о в метиленовым си- ним. Предложенный способ позволяет избирательно окрашивать серебром нуклеино- вые кислоты в присутствии примесей белков. Исследована зависимость эффективности окрашивания полинуклеотидов и цвета образовавшихся комплексов от нуклеотидного состава. Так, поли(Ь) и поли(1) окрашиваются наиболее ярко, тогда как поли(и) де- монстрирует негативное окрашивание. Введение. Постоянно растущий интерес исследователей к выявлению и характеризации бесконечно малых количеств белков и полинуклеоти- дов определил развитие целого ряда высокочувствительных методов окрашивания этих молекул. Одним из таких методов является окра- шивание белков и нуклеиновых кислот в гелях серебром. По чувстви- тельности данный метод сравним с радиоактивным мечением биомо- лекул. Окрашивание белков в ПААГ серебром, изначально предложен- ное Мерилом и др. [1], позволяет обнаружить в DS-Na-ΠΑΑΓ в 100 раз меньшее количество белка, чем обычно используемый метод окрашива- ния белков кумасси бриллиантовым голубым R-250. Позднее были опубликованы различные модификации метода, различающиеся по сложности выполнения, воспроизводимости и числу стадий [2—7]. Одна из модификаций метода окрашивания белков в ПААГ сереб- ром [3] была использована рядом исследователей для окрашивания Д Н К в полиакриламидных [8, 9] и агарозных [10] гелях, а также для обнаружения двуспиральной РНК [11]. Оказалось, что серебро явля- ется в 10—100 раз более эффективным реагентом для окрашивания двуспиральных нуклеиновых кислот, чем бромистый этидий. Несмотря на многочисленные исследования в области окрашива- ния биополимеров серебром, механизм этой реакции до сих пор оста- ется невыясненнным. В частности, не объяснена зависимость эффектив- ности окрашивания и цвета получаемого комплекса от аминокислотно- го состава белков [12—14]. Влияние нуклеотидного состава Д Н К и РНК на окрашивание серебром не описано. В данной работе предло- жена простая, хорошо воспроизводимая и высокочувствительная про- цедура окрашивания серебром тРНК и полирибонуклеотидов различ- ного состава в ПААГ, содержащих 7 M мочевину. Исследовано влия- 75 ISSN 0233-7657. БИОПОЛИМЕРЫ И КЛЕТКА. 1990. Т. 6. .Ve 4 ниє нуклеотидного состава РНК на окрашивание данным методом. Кроме того, предложенная процедура позволяет избирательно окраши- вать РНК и Д Н К в присутствии белковых примесей. Материалы и методы. В работе использованы препараты суммарной т Р Н К и смесь белков для электрофореза N4 («Serva», ФРГ) , Д Н К бактериофага λ (НПО «Фермент», Вильнюс), гомополирибонуклеотиды (НИКТИ БАВ, Бердск), акриламид и Ν, N'-мети- ленбисакриламид производства фирмы «Sigma» (США). Для приготовления растворов использовали реактивы марки «хч» или «осч» и бидистиллированную воду. Электрофорез препаратов суммарной тРНК. в 20 %-ном ПААГ (15X15 см, 1,5 мм толщиной), содержащем 7 M мочевину, проводили в 50 мМ трис-боратном буфере (рН 8,0), 1 мМ ЭДТА при напряжении 300 В в течение 2 ч. Для сравнительного яїіализа окрашивания полирибонуклеотидов различной длины и состава, РНК, Д Н К и белков серебром указанные препараты в 1—2 мкл ТЕ-буфера (10 мМ трис-HGl, рН 7,5, 1 мМ ЭДТА) наносили на 10—20 % ПААГ, предварительно обработанный 10 % глицерином. Нанесенную каплю подсушивали на воздухе в тече- ние 30 мин, далее гель фиксировали и окрашивали, как описано ниже. Ф и к с а ц и я и о к р а ш и в а н и е г е л е й . За исключением фиксации, которую желательно проводить при 2—5 °С для уменьшения диффузии материала в геле, все стадии окрашивания осуществляли при комнатной температуре. Гели фиксировали в двух сменах 30 % этанола— 10% уксусной кислоты в течение 12 ч. Гели, содержащие РНК, окрашивали в течение 30 мин в 0,02 %-ном растворе метиленового синего (рН 4,8) и отмывали водой. Окрашивание серебром проводили, как описано в таблице. Все ра- створы для приготовления гелей и окрашивания их серебром фильтровали через нитро- целлюлозные фильтры с диаметром пор 0,45 мкм. Прикасались к гелям только в пер- чатках во избежание окрашивания серебром отпечатков пальцев. Результаты и обсуждение. Известные способы окрашивания био- полимеров серебром можно разделить на две группы: 1) окрашивание на основе метода, описанного Оукли и др. [2], когда гель выдерживают в щелочном растворе диамина серебра, а за- тем восстанавливают в кислом растворе формальдегида; 2) модификация метода Мерила и др. [1], где гель сначала обра- батывают слабокислым раствором нитрата серебра, а затем раствором формальдегида в карбонате натрия. Общей чертой этих способов является обработка геля перед добав- лением серебра различными реагентами: окислителями [3, 14], солями меди [1], формальдегидом [6], облучение светом определенной длины волны [15] и т. д. Как видно из полученных результатов, представлен- ных на рис. 1, РНК эффективно окрашивается серебром в денатуриру- ющем ПААГ без предварительной обработки указанными реагентами. Причем на электрофореграмме отчетливо видно 0,1 нг РНК, т. е. чув- ствительность предложенного метода по крайней мере на три порядка превышает чувствительность окрашивания тРНК метиленовым синим. Кроме того, на электрофореграмме хорошо видны фрагменты тРНК длиной до 10 нуклеотидов, что свидетельствует о возможности исполь- зования серебра для выявления сравнительно коротких олигонук- леотидов. Условия процедуры окрашивания полинуклеотидов серебром в ПААГ Procedure for silver staining of polynucleotides in PAAG Стадия Условия Фиксация Промывка Обработка AgNO3 Промывка Восстановление Остановка реакции 30% этанол—10 % уксусная кислота; 12 ч в двух сменах Бидистиллированная вода; 3 раза по 5 мин 0,1 %-ный раствор; 30 мин Бидистиллированная вода; 3 раза по 10»—20 с 0,02 % формальдегид в 3 % Иа2СОз; 5—10 мин 1 % уксусная кислота; 5 мин 76 ISSN 0233-7657. БИОПОЛИМЕРЫ И КЛЕТКА. 1990. Т. 6. .Ve 4 Следует отметить также, что гели, окрашенные серебром, можно сколь угодно долго хранить в воде, тогда как метиленовый синий быст- ро вымывается из зон, содержащих РНК. При исследовании окрашивания серебром белков без предвари- тельной обработки геля (таблица) оказалось, что чувствительность окрашивания значительно ниже, чем в случае метода Мерила [3], когда белки, фиксированные в геле, обрабатывали бихроматом калия. Рис. 1. Электрофореграммы суммарной тРНК Е. coli, окрашенные серебром (а) и ме- тиленовым синим (б). Количество т Р Н К на дорожку (мкг): 1 — 1; 2 — 0,1; 3— 0,01; 4 — 0,001; 5 — 5; 5 — 0,1; 7 — 0,01 Fig. 1. Staining of unfractionated tRNA from Ε. coli in 20 % polyacrylamide gel with silver (a) and methylene blue (6). Lanes contain RNA in μg: jf — 1; 2 — 0.1; 5 — 0.01; 4 — 0.001; 5 — 5; 6 —OA·, 7—0.01 Рис. 2. Окрашивание серебром белков и РНК. Суммарную тРНК (а) и смесь белков (б) наносили на 10 %-ныи ПААГ капельным способом в количестве (мкг): 1 — 1; 2 — 0,1; 3 — 0,01; 4 — 0,001; 5 — 0,0001 и окрашивали, как указано в таблице Fig. 2. Silver staining of proteins and RNA. Molecular weight marker proteins (a) and unfractionated RNA (6) were spotted on 10 % polyacrylamide gel as described in «Me- thods» in quantity ^ g ) 1 - І ; 2 — 0.1; 5 — 0.01; 4 — 0.001; 5 — 0.0001. Staining was performed according to the present method (Table) Чтобы сравнить эффективность окрашивания РНК и белков, оба пре- парата наносили на 10 %-ный ПААГ, содержащий 7 M мочевину, ка- пельным способом, как описано в «Материалах и методах». Хотя чув- ствительность окрашивания при нанесении материала на гель несколько ниже, чем при введении его электрофорезом, капельный способ поз- воляет сделать сравнительный анализ взаимодействия различных био- полимеров с серебром. Как видно из рис. 2, чувствительность предло- женного метода в отношении РНК по крайней мере на два порядка превышает таковую при окрашивании белков. Поскольку серебром 77 ISSN 0233-7657. БИОПОЛИМЕРЫ И КЛЕТКА. 1990. Т. 6. .Ve 4 можно отчетливо окрасить 1 нг РНК (рис. 1), очевидно, что даже 90 % примеси белка в препарате не скажутся в этом случае на резуль- татах анализа. О к р а ш и в а н и е г о м о п о л и р и б о н у к л е о т и д о в се- р е б р о м . Для ответа на вопрос, влияет ли нуклеотидный состав РНК на окрашивание серебром, были использованы препараты гомополи- рибонуклеотидов, суммарной тРНК и Д Н К бактериофага λ, которые капельным способом наносили на гель и окрашивали, как представлено в таблице. Капельный способ введения материала в гель позволяет одновре- f менно окрашивать полинуклеотиды различной длины и состава, хотя чув- ствительность в этом случае несколь- 2 ко ниже, чем при введении полимеров в гель посредством электрофореза. Рис. 3. Окрашивание полинуклеотидов различ- ного состава серебром: 1 — поли (А); 2 — по- ли (G); 3 — поли (U); 4 — поли (С); 5 — по- ли (I); 6 — тРНК; 7 — Д Н К фага λ в количе- стве (мкг): а — 1; 6 — 0,1; в — 0,01; г — 0,001 наносили на 10 %-ный ПААГ капельным спо- собом и окрашивали, как указано в таблице Fig. 3. Silver staining of polynucleotides of different composition: 1 — poly(A), 2 — po- Iy(G), 3 — poly(U), 4 — poly(C), 5 — poly(I) , 6 — tRNA, 7 — bacteriophage λ DNA were spotted on 10 % polyacrylamide gel in follo- wing quantities (in μg) : a—1; б — 0.1; в — 0.01; г — 0.001 and stained as described in Table На рис. 3 представлены результаты окрашивания различных по- линуклеотидов, РНК и Д Н К серебром. Видно, что наиболее высокая чувствительность наблюдается при окрашивании поли(О) и поли(1); поли (А) и поли (С) окрашиваются несколько хуже (сравнимо с сум- марной тРНК и ДНК) , а поли(U) демонстрирует негативное окраши- вание, т. е. связывание серебра в месте нанесения поли (U) происходит хуже, чем в чистом геле. Следует отметить, что при обработке серебром различных гомополирибонуклеотидов наблюдаются отличия не только в эффективности окрашивания, но и в цвете образовавшихся комплек- сов. Как указывалось выше, подобное дифференцирование было опи- сано для некоторых белков и полипептидов с различным аминокислот- ным составом [12—14]. Поскольку механизм взаимодействия серебра с белками и нуклеиновыми кислотами до сих пор остается неясным, данные о влиянии нуклеотидного состава РНК на взаимодействие с серебром представляют полезную информацию для дальнейшего иссле- дования этой реакции. THE DEPENDENCE OF SILVER STAINING OF POLYRIBONUCLEOTIDES IN POLYACRYLAMIDE GELS ON NUCLEOTIDE SEQUENCE I. A. Nazarenko, L. V. Matskova University, Novosibirsk Insti tute of Molecular Biology, Koltsovo, Novosibirsk Region S u m m a r y A simple and reliable method for silver staining of RNA and homopolyribonucleotides af- ter electrophoresis in PAAG, containing 7M of urea, is described. The sensitivity of the method is by three orders of magni tude higher than that of the staining with methylene blue. RNA-silver complex formation is shown to be dependent on the composition of poly- ribonucleotides. Thus, maximum sensitivity of the method is observed with poly (G) and poly (I), while poly (U) demonstrates negative staining. 78 ISSN 0233-7657. БИОПОЛИМЕРЫ И КЛЕТКА. 1990. Т. 6. .Ve 4 СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 1. Switzer R. S., Merril С. RShifrin S. A highly sensitive silver stain for detecting pro- teins and peptides in polyacrylamide g e l s / / A n a l . Biochem.— 1979. — 98, N 1.— P. 231—237. 2. Oakley B. R., Kirsch D. RMorris N. R. A simplified ultrasensitive silver stain for de- tecting proteins in PAAG / / Ibid. — 1980. — 105, N 2. — P . 361—363. 3. Ultrasensitive stain for proteins in PAAG shows regional variat ions in cerebrospinal fluid proteins / C. R. Merril, D. Goldman, S. A. Sedman, M. N. Ebert / / Science. — 1981. — 211, N 4489. — P . 1437^—1438. 4. Ohsawa K, Ebata N. Silver stain for detection 10 femtogram quantities of protein af- ter PAAG / / Anal. Biochem. — 1983. — 135, N 2. — P. 409—415. 5. Heukeshoven J.. Dernick R. Simplified method for silver staining of proteins in poly- acrylamide gels and the mechanism of silver s t a in ing / /E lec t rophores i s .— 1985. — 6, N 1. — P . 103—112. 6. Blum H., Beier H., Gross H. J. Improved silver staining of plant proteins, RNA and DNA in polyacrylamide gels / / Ibid. — 1987. — 8, N 1. — P. 93—99. 7. Wedryehowski A., Olinski R., Hniliea L. S. Modified method of silver staining of pro- teins in polyacrylamide g e l s / / A n a l . Biochem. — 1986. — 159, N 2. — P. 323—328. 8. Beidler J. LHilliard P. R., Rill R. L. Ultrasensitive staining of nucleic acids with silver / / Ibid.— 1982.— 126, N 2.— P. 374—380. 9. Brown M., Petrie Ai., Middleton P. J. Silver staining of DNA restriction f ragments for the rapid identification of adenovirus i s o l a t e d / / J . Virol. Meth.— 1984.— 9, N 1.— P. 87—98. 10. Peats S. Quantitation of protein and DNA in silver stained agarose gels / / A n a l . Bio- chem. — 1984. — 140, N 1. — P . 178—182. 11. Berry M. J., Samuel С. E. Detection of subnanogram amounts of RNA in polyacrylami- de gels in the presence and absence of proteins by staining with silver / / Ibid. — 1982. — 124, N 1. — P . 180—184. 12. Silver s taining of proteins in polyacrylamide g e l s / W . Wray, T. Boulikas, V. P. Wray, R. H a n c o c / / I b i d . — 1981. — 118, N 1. — P . 197—203. 13. Friedman R. D. Comparison of four different silver staining techniques for salivary proteins detection in alaline polyacrylamide gels / / Ibid. — 1982. — 126, N 2.— P. 346—349. 14. Nielsen B. L., Brown L. R. The basis for colored silver-protein complex formation in stained polyacrylamide gels / / Ibid. — 1984. — 141, N 2. — P. 311—315. 15. Molecular probes for human genetics diseases by two-dimensional electrophoresis and silver staining / C. R. Merril, D. Goldman, M. L. van Keuren, M. H. Ebert / / Electro- p h o r e s i s ^ . Adv. Meth. Biochem. and Clin. Appl. Proc. / Ed. D. Stathkos. — Berlin; New York: Walter de Gruyted and Co., 1983. — P . 327—342. Новосиб. гос. ун-т им. Ленинского комсомола Получено 02.01.90 ВНИИ молекуляр. биологии, пос. Кольцово Новосиб. обл. УДК '535.3:543.423:577.1 © Д. Н. Говорун, Я. Р. Мищук, Н. В. Желтовский, 1990 К ВОПРОСУ О ПРИРОДЕ НИЗКОЧАСТОТНЫХ СПЕКТРОВ КОМБИНАЦИОННОГО РАССЕЯНИЯ СВЕТА БИОПОЛИМЕРОВ Работа посвящена анализу некоторых особенностей низкочастотного KP света в био- полимерах. Авторы уделяют внимание проблеме идентификации низкочастотных коле- бательных мод биополимеров на внутренние и внешние, показывают, к каким неконтро- лируемым погрешностям приводит неучет фактора Бозе — Эйнштейна, приходят к вы- воду о перспективности низкочастотного KP света для определения фрактальных свойств биополимеров. В последнее время возрос интерес к экспериментальному исследова- нию низкоэнергетических ( v < 2 0 0 см-1) колебательных состояний био- полимеров (см., например, работы [1—8], а также приведенную в них библиографию) методами спектроскопии комбинационного рассеяния (KP) света. Это объясняется, по-видимому, тем, что низкочастотным (НЧ) коллективным модам биополимеров, в частности ДНК, приписы- ваются важные биологические функции [9, 10]. В этом сообщении обсуждаются некоторые особенности НЧ спект- ров KP биополимеров. 79 ISSN 0233-7657. БИОПОЛИМЕРЫ И КЛЕТКА. 1990. Т. 6. .Ve 4