Экология желтогорлой мыши Sylvaemus tauricus (= flavicollis) в Крыму
Желтогорлая мышь (ЖМ) — фоновый вид Горного Крыма, образующий здесь географически изолированную популяцию. Ареал включает в себя всю горно-лесную зону, и лишь по интразональным биотопам ЖМ в незначительном количестве проникает к границе со степной зоной. В пределах ареала ЖМ отлавливаются в 40,1% уч...
Gespeichert in:
Datum: | 2004 |
---|---|
1. Verfasser: | |
Format: | Artikel |
Sprache: | Russian |
Veröffentlicht: |
Інститут зоології ім. І. І. Шмальгаузена НАН України
2004
|
Schlagworte: | |
Online Zugang: | http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/3340 |
Tags: |
Tag hinzufügen
Keine Tags, Fügen Sie den ersten Tag hinzu!
|
Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
Zitieren: | Экология желтогорлой мыши Sylvaemus tauricus (= flavicollis) в Крыму / И. Л. Евстафьев // Вестн. зоологии. — 2004. — Т. 38, № 4. — С. 39-46. — рос. |
Institution
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of UkraineZusammenfassung: | Желтогорлая мышь (ЖМ) — фоновый вид Горного Крыма, образующий здесь географически изолированную популяцию. Ареал включает в себя всю горно-лесную зону, и лишь по интразональным биотопам ЖМ в незначительном количестве проникает к границе со степной зоной. В пределах ареала ЖМ отлавливаются в 40,1% учетных линий, в среднем — (4,64 ± 0,55) экз. на линию. Относительная численность ЖМ меняется по годам (от 0,3 до 5,9 экз. на 100 л/с), а также сезонам и типам стаций. Соотношение полов близко к 1 (доля самцов — 0,51, самок — 0,49). Беременные самки составили 26,2%, а количество эмбрионов — 1–9, в среднем — (5,44 ± 0,42) эмбр. Наиболее активно размножение идет в апреле—июле (87,8%). Количество плацентарных пятен — 2–12 шт., в среднем — 5,95 ± 0,40. Фоновыми видами эктопаразитов ЖМ являются Laelaps agilis (36,3%), Ixodes ricinus (18,7), Ctenophthalmus proximus (11,4), Haemogamasus nidi (8,5), Androlaelaps glasgowi (4,7), Eulaelaps stabularis (4,2), Haemogamasus hirsutosimilis (4,1), Nosopsyllus consimilis (2,9), Ctenophthalmus wagneri (2,2), Leptopsylla taschenbergi (1,1). |
---|