Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей
Традиционно исследование сообщества кишечных паразитов лошадей проводится post mortem методами. Целью работы было изучение сообщества кишечных гельминтов племенных лошадей из трех областей Украины после их обработки аверсектиновыми антигельминтными препаратами. У исследованных лошадей зарегистрирова...
Збережено в:
| Дата: | 2004 |
|---|---|
| Автори: | , , , |
| Формат: | Стаття |
| Мова: | Russian |
| Опубліковано: |
Інститут зоології ім. І. І. Шмальгаузена НАН України
2004
|
| Теми: | |
| Онлайн доступ: | http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/3360 |
| Теги: |
Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
|
| Назва журналу: | Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| Цитувати: | Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей / Т. А. Кузьмина, В. А. Харченко, А. И. Старовир, Г. М. Двойнос // Вестн. зоологии. — 2004. — Т. 38, № 5. — С. 67-70. — рос. |
Репозитарії
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine| id |
irk-123456789-3360 |
|---|---|
| record_format |
dspace |
| spelling |
irk-123456789-33602009-09-03T11:29:47Z Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей Кузьмина, Т.А. Харченко, В.А. Старовир, А.И. Двойнос, Г.М. Методика Традиционно исследование сообщества кишечных паразитов лошадей проводится post mortem методами. Целью работы было изучение сообщества кишечных гельминтов племенных лошадей из трех областей Украины после их обработки аверсектиновыми антигельминтными препаратами. У исследованных лошадей зарегистрировано 25 видов нематод отряда Strongylida, при этом у одного животного обнаружено от 7 до 20 видов стронгилид. Доминирующими видами были Cylicocyclus nassatus и Cyathostomum catinatum, которые зарегистрированы у 100% лошадей и составили соответственно 36,5% и 17,5% общего количества собранных стронгилид. Cylicocyclus leptostomus, Cylicocyclus ashworthi, Cylicostephanus calicatus, Cylicostephanus longibursatus и Cylicostephanus minutus обнаружены у 80% лошадей и составили в сумме 36,1% количества собранных стронгилид. Кроме стронгилид, в пробах обнаружены половозрелые и личиночные стадии Parascaris equorum, Oxyuris equi, а также личинки желудочных оводов рода Gasterophilus. Обсуждается возможность использования метода диагностической дегельминтизации для изучения видового состава кишечных гельминтов эквид. Commonly, the intestinal helminth communities of horses are studied by the post mortem methods. The aim of our investigation was to study the intestinal strongylid community of brood horses from three regions of Ukraine after de-worming using aversektin anthelmintic drugs. Twenty five strongylid species were found in the horse examined. Every horse was parasitized by 7 to 20 strongylid species. The most prevalent species were Cylicocyclus nassatus and Cyathostomum catinatum. They were found in 100% of horses examined and composed respectively 36.5% and 17.5% of the total number of the strongylids collected. Cylicocyclus leptostomus, Cylicocyclus ashworthi, Cylicostephanus calicatus, Cylicostephanus longibursatus and Cylico-stephanus minutus were found in 80% of horses examined and composed in sum 36.1% of the total num¬ber of the strongylids collected. Besides the Strongylida, the adult and larval stages of Parascaris equorum, Oxyuris equi and the larvae of the gastric bots of the genus Gasterophilus were found in faecal samples. The possibility of using the diagnostical deworming method to study the species composition of horses was discussed. 2004 Article Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей / Т. А. Кузьмина, В. А. Харченко, А. И. Старовир, Г. М. Двойнос // Вестн. зоологии. — 2004. — Т. 38, № 5. — С. 67-70. — рос. 0084-5604 http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/3360 576.895.1:599.723 ru Інститут зоології ім. І. І. Шмальгаузена НАН України |
| institution |
Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine |
| collection |
DSpace DC |
| language |
Russian |
| topic |
Методика Методика |
| spellingShingle |
Методика Методика Кузьмина, Т.А. Харченко, В.А. Старовир, А.И. Двойнос, Г.М. Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей |
| description |
Традиционно исследование сообщества кишечных паразитов лошадей проводится post mortem методами. Целью работы было изучение сообщества кишечных гельминтов племенных лошадей из трех областей Украины после их обработки аверсектиновыми антигельминтными препаратами. У исследованных лошадей зарегистрировано 25 видов нематод отряда Strongylida, при этом у одного животного обнаружено от 7 до 20 видов стронгилид. Доминирующими видами были Cylicocyclus nassatus и Cyathostomum catinatum, которые зарегистрированы у 100% лошадей и составили соответственно 36,5% и 17,5% общего количества собранных стронгилид. Cylicocyclus leptostomus, Cylicocyclus ashworthi, Cylicostephanus calicatus, Cylicostephanus longibursatus и Cylicostephanus minutus обнаружены у 80% лошадей и составили в сумме 36,1% количества собранных стронгилид. Кроме стронгилид, в пробах обнаружены половозрелые и личиночные стадии Parascaris equorum, Oxyuris equi, а также личинки желудочных оводов рода Gasterophilus. Обсуждается возможность использования метода диагностической дегельминтизации для изучения видового состава кишечных гельминтов эквид. |
| format |
Article |
| author |
Кузьмина, Т.А. Харченко, В.А. Старовир, А.И. Двойнос, Г.М. |
| author_facet |
Кузьмина, Т.А. Харченко, В.А. Старовир, А.И. Двойнос, Г.М. |
| author_sort |
Кузьмина, Т.А. |
| title |
Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей |
| title_short |
Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей |
| title_full |
Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей |
| title_fullStr |
Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей |
| title_full_unstemmed |
Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей |
| title_sort |
применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей |
| publisher |
Інститут зоології ім. І. І. Шмальгаузена НАН України |
| publishDate |
2004 |
| topic_facet |
Методика |
| url |
http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/3360 |
| citation_txt |
Применение метода диагностической дегельминтизации для изучения кишечных гельминтов лошадей / Т. А. Кузьмина, В. А. Харченко, А. И. Старовир, Г. М. Двойнос // Вестн. зоологии. — 2004. — Т. 38, № 5. — С. 67-70. — рос. |
| work_keys_str_mv |
AT kuzʹminata primeneniemetodadiagnostičeskojdegelʹmintizaciidlâizučeniâkišečnyhgelʹmintovlošadej AT harčenkova primeneniemetodadiagnostičeskojdegelʹmintizaciidlâizučeniâkišečnyhgelʹmintovlošadej AT starovirai primeneniemetodadiagnostičeskojdegelʹmintizaciidlâizučeniâkišečnyhgelʹmintovlošadej AT dvojnosgm primeneniemetodadiagnostičeskojdegelʹmintizaciidlâizučeniâkišečnyhgelʹmintovlošadej |
| first_indexed |
2025-07-02T06:40:20Z |
| last_indexed |
2025-07-02T06:40:20Z |
| _version_ |
1836516293108301824 |
| fulltext |
ÓÄÊ 576.895.1:599.723
ÏÐÈÌÅÍÅÍÈÅ ÌÅÒÎÄÀ ÄÈÀÃÍÎÑÒÈ×ÅÑÊÎÉ
ÄÅÃÅËÜÌÈÍÒÈÇÀÖÈÈ ÄËß ÈÇÓ×ÅÍÈß
ÊÈØÅ×ÍÛÕ ÃÅËÜÌÈÍÒΠËÎØÀÄÅÉ
Ò. À. Êóçüìèíà, Â. À. Õàð÷åíêî, À. È. Ñòàðîâèð, Ã. Ì. Äâîéíîñ
Èíñòèòóò çîîëîãèè èì. È. È. Øìàëüãàóçåíà ÍÀÍ Óêðàèíû,
óë. Á. Õìåëüíèöêîãî, 15, Êèåâ, 01601 Óêðàèíà
E-mail: rhabdias@carrier.kiev.ua
Ïîëó÷åíî 16 äåêàáðÿ 2003
Ïðèìåíåíèå ìåòîäà äèàãíîñòè÷åñêîé äåãåëüìèíòèçàöèè äëÿ èçó÷åíèÿ êèøå÷íûõ ãåëüìèíòîâ ëîøà-
äåé. Êóçüìèíà Ò. À., Õàð÷åíêî Â. À., Ñòàðîâèð À. È., Äâîéíîñ Ã. Ì. — Òðàäèöèîííî èññëåäîâà-
íèå ñîîáùåñòâà êèøå÷íûõ ïàðàçèòîâ ëîøàäåé ïðîâîäèòñÿ post mortem ìåòîäàìè. Öåëüþ ðàáîòû
áûëî èçó÷åíèå ñîîáùåñòâà êèøå÷íûõ ãåëüìèíòîâ ïëåìåííûõ ëîøàäåé èç òðåõ îáëàñòåé Óêðà-
èíû ïîñëå èõ îáðàáîòêè àâåðñåêòèíîâûìè àíòèãåëüìèíòíûìè ïðåïàðàòàìè. Ó èññëåäîâàííûõ
ëîøàäåé çàðåãèñòðèðîâàíî 25 âèäîâ íåìàòîä îòðÿäà Strongylida, ïðè ýòîì ó îäíîãî æèâîòíîãî
îáíàðóæåíî îò 7 äî 20 âèäîâ ñòðîíãèëèä. Äîìèíèðóþùèìè âèäàìè áûëè Cylicocyclus nassatus è
Cyathostomum catinatum, êîòîðûå çàðåãèñòðèðîâàíû ó 100% ëîøàäåé è ñîñòàâèëè ñîîòâåòñòâåííî
36,5% è 17,5% îáùåãî êîëè÷åñòâà ñîáðàííûõ ñòðîíãèëèä. Cylicocyclus leptostomus, Cylicocyclus
ashworthi, Cylicostephanus calicatus, Cylicostephanus longibursatus è Cylicostephanus minutus îáíàðó-
æåíû ó 80% ëîøàäåé è ñîñòàâèëè â ñóììå 36,1% êîëè÷åñòâà ñîáðàííûõ ñòðîíãèëèä. Êðîìå
ñòðîíãèëèä, â ïðîáàõ îáíàðóæåíû ïîëîâîçðåëûå è ëè÷èíî÷íûå ñòàäèè Parascaris equorum, Oxy-
uris equi, à òàêæå ëè÷èíêè æåëóäî÷íûõ îâîäîâ ðîäà Gasterophilus. Îáñóæäàåòñÿ âîçìîæíîñòü èñ-
ïîëüçîâàíèÿ ìåòîäà äèàãíîñòè÷åñêîé äåãåëüìèíòèçàöèè äëÿ èçó÷åíèÿ âèäîâîãî ñîñòàâà êèøå÷-
íûõ ãåëüìèíòîâ ýêâèä.
Êëþ÷åâûå ñ ëîâ à: Strongylida, ëîøàäè, ìåòîä äèàãíîñòè÷åñêîé äåãåëüìèíòèçàöèè, ãåëüìèí-
òû ëîøàäåé.
Application of the Diagnostical Deworming Method to the Horses Intestinal Helminths Investigation.
Kuzmina T. A., Kharchenko V. A., Starovir A. S., Dvoinos G. M. — Commonly, the intestinal helminth
communities of horses are studied by the post mortem methods. The aim of our investigation was to
study the intestinal strongylid community of brood horses from three regions of Ukraine after de-
worming using aversektin anthelmintic drugs. Twenty five strongylid species were found in the horse
examined. Every horse was parasitized by 7 to 20 strongylid species. The most prevalent species were
Cylicocyclus nassatus and Cyathostomum catinatum. They were found in 100% of horses examined and
composed respectively 36.5% and 17.5% of the total number of the strongylids collected. Cylicocyclus
leptostomus, Cylicocyclus ashworthi, Cylicostephanus calicatus, Cylicostephanus longibursatus and Cylico-
stephanus minutus were found in 80% of horses examined and composed in sum 36.1% of the total num-
ber of the strongylids collected. Besides the Strongylida, the adult and larval stages of Parascaris
equorum, Oxyuris equi and the larvae of the gastric bots of the genus Gasterophilus were found in faecal
samples. The possibility of using the diagnostical deworming method to study the species composition
of horses was discussed.
Ke y wo r d s: Strongylida, horses, the diagnostical deworming method, helminths of horses.
Ââåäåíèå
 êèøå÷íèêå ëîøàäèíûõ (Equidae) ïàðàçèòèðóåò áîëåå 90 âèäîâ ãåëüìèíòîâ (Äâîéíîñ, Õàð-
÷åíêî, 1994). Íåñìîòðÿ íà òî ÷òî áîëüøèíñòâî ãåëüìèíòîçîâ ïðîõîäÿò â ñóáêëèíè÷åñêîé ôîðìå, îíè
ïðåäñòàâëÿþò ñåðüåçíóþ ïðîáëåìó äëÿ çäîðîâüÿ ëîøàäåé.
Òðàäèöèîííî èññëåäîâàíèå ñòðóêòóðû ñîîáùåñòâà êèøå÷íûõ ïàðàçèòîâ ëîøàäåé ïðîâîäèòñÿ
post mortem ìåòîäàìè ïîñëå çàáîÿ æèâîòíîãî (Bucknell et al., 1996; Eydal, 1983; Gawor, 1995; Konigova
et al., 2001; Lyons et al., 2000; Mfitilodze, Hutchinson, 1985; Reinemeyer et al., 1984; Äâîéíîñ, Õàð÷åíêî,
1994). Òàêîé ïîäõîä õîòÿ è ïîçâîëÿåò óñòàíîâèòü âèäîâîé ñîñòàâ êèøå÷íûõ ïàðàçèòîâ îòäåëüíîãî
æèâîòíîãî, íî äåëàåò ïðàêòè÷åñêè íåâîçìîæíûì èçó÷åíèå ãåëüìèíòîâ öåííûõ ïëåìåííûõ ëîøàäåé,
à òàêæå îõðàíÿåìûõ âèäîâ òàêèõ, êàê Equus przewalskii Poljakov, 1881 è äðóãèõ.
Vestnik zoologii, 38(5): 67–70, 2004
© Ò. À. Êóçüìèíà, Â. À. Õàð÷åíêî,
À. È. Ñòàðîâèð, Ã. Ì. Äâîéíîñ, 2004
Ìåòîäèêà
Èññëåäîâàíèå êèøå÷íûõ ãåëüìèíòîâ ëîøàäåé è êðóïíîãî ðîãàòîãî ñêîòà ïîñëå îáðàáîòêè
àíòèãåëüìèíòíûìè ïðåïàðàòàìè ïðèìåíÿëñÿ â âåòåðèíàðíîé ïðàêòèêå åùå 50 ëåò íàçàä (Ëàáîðàòîð-
íûå..., 1953). Îäíàêî èç-çà íåâûñîêîé ïðîòèâîïàðàçèòàðíîé ýôôåêòèâíîñòè àíòèãåëüìèíòíûõ, èñ-
ïîëüçóåìûõ â òî âðåìÿ, ïðåïàðàòîâ ÷àñòü ïàðàçèòîâ íå ïîääàâàëàñü èõ âîçäåéñòâèþ. Ïðèìåíåíèå
ñîâðåìåííûõ àíòèãåëüìèíòèêîâ, èìåþùèõ ýôôåêòèâíîñòü áëèçêóþ ê 100%, äàåò âîçìîæíîñòü ïðè-
æèçíåííîãî ñáîðà è îïðåäåëåíèÿ âñåõ ïàðàçèòè÷åñêèõ íåìàòîä, íàõîäÿùèõñÿ â êèøå÷íèêå ëîøàäè
(Osterman Lind et al., 2003).
Öåëüþ íàøåé ðàáîòû áûëî èññëåäîâàíèå ñîîáùåñòâà êèøå÷íûõ ãåëüìèíòîâ ïëåìåííûõ ëîøà-
äåé Óêðàèíû ïîñëå äåãåëüìèíòèçàöèè àâåðñåêòèíîâûìè àíòèãåëüìèíòèêàìè.
Ìàòåðèàë è ìåòîäû
Âèäîâîé ñîñòàâ êèøå÷íûõ ãåëüìèíòîâ ïëåìåííûõ ëîøàäåé èññëåäîâàëè íà 41 æèâîòíîì ðàçíûõ
âîçðàñòîâ: 24 ëîøàäè èç Äóáðîâñêîãî êîííîãî çàâîäà (Ïîëòàâñêàÿ îáë.), 12 ëîøàäåé Áåëîöåðêîâñêî-
ãî àãðàðíîãî óíèâåðñèòåòà (Êèåâñêàÿ îáë.) è 5 ëîøàäåé èç Ñóìñêîãî êîííîãî çàâîäà (Ñóìñêàÿ îáë.).
Äî íà÷àëà ýêñïåðèìåíòà îïðåäåëÿëè çàðàæåííîñòü æèâîòíûõ êèøå÷íûìè Strongylida ïî ìåòîäó
ÌñÌàster’a ñ ÷óâñòâèòåëüíîñòüþ 25 ÿèö â 1 ã ôåêàëèé (Herd, 1992). Ëîøàäåé îáðàáîòàëè àâåðñåêòè-
íîâûì àíòèãåëüìèíòíûì ïðåïàðàòîì «Óíèâåðì» ïðîèçâîäñòâà ÍÏÎ «Ôàðìáèîìåä» (Ìîñêâà, Ðîñ-
ñèÿ) è àâåðñåêòèíîâûì ïðåïàðàòîì «Íåìàñåêòèí», ïðîèçâîäñòâà ÍÏÎ «Óêðçîîâåòïðîìñíàá» (Êèåâ,
Óêðàèíà). Ïðåïàðàò äàâàëè âìåñòå ñ êîðìîì â äîçèðîâêå 50 ìã íà 1 êã ìàññû æèâîòíîãî.
×åðåç 24, 36, 48 è 60 ÷àñîâ ó âñåõ ëîøàäåé îòîáðàëè ïðîáû ôåêàëèé (ïî 200 ã îò êàæäîãî æèâîò-
íîãî), èç êîòîðûõ âûáèðàëè âñåõ ãåëüìèíòîâ. Îíè áûëè ôèêñèðîâàíû â 4%-íîì ôîðìàëèíå â ôèç-
ðàñòâîðå, ïðîñâåòëåíû â 80%-íîì ðàñòâîðå ôåíîëà â ãëèöåðèíå è îïðåäåëåíû äî âèäà ïîä ñâåòîâûì
ìèêðîñêîïîì. Êèøå÷íûõ ñòðîíãèëèä îïðåäåëÿëè ñîãëàñíî ìîðôîëîãè÷åñêèì îïèñàíèÿì (Äâîéíîñ,
Õàð÷åíêî, 1994; Lichtenfels, 1975).
Ðåçóëüòàòû
 õîäå ïðåäâàðèòåëüíîãî èññëåäîâàíèÿ óñòàíîâëåíî, ÷òî âñå ëîøàäè çàðàæå-
íû êèøå÷íûìè ñòðîíãèëèäàìè. Ñðåäíåå êîëè÷åñòâî ÿèö ïàðàçèòîâ â 1 ã ôåêàëèé
(EPG) ñîñòàâëÿëî îò 350 äî 2000 (ñðåäíåå EP 937).
Ïðîòèâîíåìàòîäíàÿ ýôôåêòèâíîñòü ïðåïàðàòîâ «Óíèâåðì» è «Íåìàñåêòèí»
ñîñòàâëÿëà 100%. Íà 14-å ñóò ïîñëå äåãåëüìèíòèçàöèè âñåõ ëîøàäåé ÿéöà ñòðîí-
ãèëèä â ôåêàëèÿõ íå îáíàðóæèâàëè. Ïîñëå ïðîâåäåíèÿ äåãåëüìèíòèçàöèè ëîøà-
äåé ñîáðàíî è îïðåäåëåíî äî âèäà 16 360 ýêç. ñòðîíãèëèä. Ó èññëåäîâàííûõ ëî-
øàäåé çàðåãèñòðèðîâàíî 25 âèäîâ êèøå÷íûõ íåìàòîä îòðÿäà Strongylida (òàáë. 1).
Ïðè ýòîì ó îäíîé ëîøàäè îáíàðóæèâàëè îò 7 äî 20 âèäîâ ñòðîíãèëèä. Äîìèíè-
ðóþùèìè âèäàìè áûëè Cylicocyclus nassatus è Cyathostomum catinatum, êîòîðûå
çàðåãèñòðèðîâàíû ó 100% ëîøàäåé; îíè ñîñòàâèëè ñîîòâåòñòâåííî 36,5% è 17,5%
îáùåãî êîëè÷åñòâà ñîáðàííûõ èç ôåêàëèé ñòðîíãèëèä. Òàêèå âèäû, êàê Cylico-
cyclus leptostomus, Cylicocyclus ashworthi, Cylicostephanus calicatus, Cylicostephanus lon-
gibursatus è Cylicostephanus minutus îáíàðóæåíû ó 80% èññëåäîâàííûõ ëîøàäåé è
ñîñòàâëÿëè 36,1% êîëè÷åñòâà ñîáðàííûõ ñòðîíãèëèä. Íà äîëþ îñòàëüíûõ 18 âè-
äîâ ïðèõîäèòñÿ ìåíåå 10% êîëè÷åñòâà ñîáðàííûõ íåìàòîä.
Êðîìå êèøå÷íûõ ñòðîíãèëèä â ôåêàëèÿõ èññëåäîâàííûõ ëîøàäåé îáíàðó-
æèâàëè ïîëîâîçðåëûå è ëè÷èíî÷íûå ñòàäèè Parascaris equorum, Oxiuris equi, à òàê-
æå ëè÷èíêè æåëóäî÷íûõ îâîäîâ ðîäà Gasterophilus. Îäíàêî êîëè÷åñòâåííûé ó÷åò
ýòèõ âèäîâ êèøå÷íûõ ïàðàçèòîâ íå ïðîâîäèëè èç-çà íåäîñòàòî÷íîãî êîëè÷åñòâà
ôåêàëüíîãî ñóáñòðàòà, îòîáðàííîãî äëÿ èññëåäîâàíèé.
Îáñóæäåíèå
Ñðàâíåíèå íàøèõ ðåçóëüòàòîâ ñ äàííûìè äðóãèõ àâòîðîâ, ðàíåå èçó÷àâøèõ
êèøå÷íûõ ñòðîíãèëèä ëîøàäåé â Óêðàèíå (Äâîéíîñ, 1969; Äâîéíîñ, Õàð÷åíêî,
1994), óêàçûâàåò íà òî, ÷òî ñîîòíîøåíèå îñíîâíûõ âèäîâ Strongylida, ïîëó÷åííûõ
ïðè äèàãíîñòè÷åñêîé äåãåëüìèíòèçàöèè, òî÷íî òàêîå æå, êàê è ïðè post morten
èññëåäîâàíèè.  ñîîáùåñòâå êèøå÷íûõ ñòðîíãèëèä èññëåäîâàííûõ ëîøàäåé äîìè-
íèðîâàëè 7 âèäîâ — C. nassatus, C. catinatum, C. ashworthi, C. longibursatus, C. cali-
catus, C. leptostomus è C. minutus. Îíè ñîñòàâëÿëè áîëåå 90% ñîîáùåñòâà.
68 Ò. À. Êóçüìèíà, Â. À. Õàð÷åíêî, À. È. Ñòàðîâèð, Ã. Ì. Äâîéíîñ
Òàáëèö à 1. Êèøå÷íûå Strongylida ïëåìåííûõ ëîøàäåé Óêðàèíû
Ta b l e 1. The intestinal Strongylida of the brood horses of Ukraine
Ïî ñðàâíåíèþ ñ ðàáîòàìè Ã. Ì. Äâîéíîñà è Â. À. Õàð÷åíêî (Äâîéíîñ, Õàð-
÷åíêî, 1994), â íàøåì èññëåäîâàíèè íå áûëè îáíàðóæåíû 10 äîñòàòî÷íî ðåäêèõ
äëÿ Óêðàèíû âèäîâ ñòðîíãèëèä. Îäíàêî, ïî íàøåìó ìíåíèþ, ýòî ñâÿçàíî íå ñ
íåäîñòàòêàìè ïðèìåíÿåìîãî ìåòîäà, à ñ ìàëûì êîëè÷åñòâîì âêëþ÷åííûõ â ýêñ-
ïåðèìåíò æèâîòíûõ è íåáîëüøîé ïëîùàäüþ ðåãèîíà èññëåäîâàíèé.
Âàæíûì ïðåèìóùåñòâîì ìåòîäà äèàãíîñòè÷åñêîé äåãåëüìèíòèçàöèè ÿâëÿ-
åòñÿ âîçìîæíîñòü ïîëó÷åíèÿ ãåëüìèíòîëîãè÷åñêîãî ìàòåðèàëà áåç íåîáõîäèìîãî
ïðè äðóãèõ ìåòîäàõ óíè÷òîæåíèÿ æèâîòíîãî. Ýòîò ìåòîä ïîçâîëÿåò ïðîâîäèòü
èññëåäîâàíèÿ êèøå÷íûõ íåìàòîä öåííûõ ïëåìåííûõ ëîøàäåé, çàáîé êîòîðûõ â
íàó÷íûõ öåëÿõ èñêëþ÷àåòñÿ.
Êðîìå òîãî, ñ èñïîëüçîâàíèåì ìåòîäà äèàãíîñòè÷åñêîé äåãåëüìèíòèçàöèè
ïîÿâëÿåòñÿ âîçìîæíîñòü èçó÷åíèÿ ãåëüìèíòîôàóíû îõðàíÿåìûõ æèâîòíûõ, òà-
êèõ êàê E. przewalskii, à òàêæå æèâîòíûõ, êîòîðûå ñîäåðæàòñÿ â çîîïàðêàõ è íà-
öèîíàëüíûõ ïàðêàõ Óêðàèíû è äðóãèõ ñòðàí.
 èññëåäîâàíèÿõ, ïðîâåäåííûõ â Øâåöèè, äëÿ èçó÷åíèÿ êèøå÷íûõ ñòðîíãè-
ëèä ïîñëå äåãåëüìèíòèçàöèè èñïîëüçîâàëè òàêæå áåíçèìèäàçîëüíûå ïðåïàðàòû,
òàêèå êàê ôåíáåíäàçîë. Îäíàêî, â ñâÿçè ñ øèðîêî ðàñïðîñòðàíåííîé ðåçèñòåíò-
íîñòüþ êèøå÷íûõ öèàòîñòîìèí ëîøàäåé ê áåíçèìèäàçîëüíûì ïðåïàðàòàì
(Borgsteede et al., 1997; Craig, 1993), ÷àñòü óñòîé÷èâûõ âèäîâ áóäåò èçáåãàòü âîç-
äåéñòâèÿ ïðåïàðàòà è èñêëþ÷àòüñÿ èç èññëåäîâàíèÿ.
Êàê óñòàíîâëåíî â ðåçóëüòàòå íàøèõ èññëåäîâàíèé, ìåòîä äèàãíîñòè÷åñêîé
äåãåëüìèíòèçàöèè ïîçâîëÿåò èññëåäîâàòü íå òîëüêî êèøå÷íûõ ñòðîíãèëèä, íî
òàêæå è äðóãèõ ãåëüìèíòîâ ëîøàäåé. Â ôåêàëèÿõ èññëåäîâàííûõ ëîøàäåé îáíà-
ðóæåíû êàê ïîëîâîçðåëûå, òàê è ëè÷èíî÷íûå ôîðìû P. equorum, O. equi, à òàêæå
ëè÷èíêè æåëóäî÷íûõ îâîäîâ. Îäíàêî äëÿ èçó÷åíèÿ ýòèõ âèäîâ ïàðàçèòîâ â äàí-
69Ïðèìåíåíèå ìåòîäà äèàãíîñòè÷åñêîé äåãåëüìèíòèçàöèè…
Strongylus vulgaris 2,8 29,3 0,2
S. edentatus 2,6 12,2 0,1
S. equinus 1,9 17,1 0,1
Triodontophorus serratus 3,3 19,5 0,2
T. brevicauda 4,8 14,3 0,2
T. nipponicus 1,7 7,3 0,1
Cylicocyclus nassatus 145,6 100,0 36,5
C. insigne 7,3 34,1 0,6
C. leptostomus 40,8 87,8 8,9
C. ashworthi 32,1 95,1 7,6
C. elongatus 6,5 19,5 0,3
C. radiatus 3,0 4,9 0,1
Cyathostomum catinatum 69,7 100,0 17,5
C. pateratum 4,3 48,8 0,5
Cylicostephanus calicatus 26,4 92,7 6,1
C. longibursatus 39,4 95,1 9,4
C. hybridus 10,2 12,2 0,3
C. minutus 19,8 82,9 4,1
C. goldi 5,9 73,2 1,1
Coronocyclus coronatus 11,5 82,9 2,4
C. labratus 9,9 48,8 1,2
C. labiatus 11,4 46,3 1,3
Petrovinema poculatum 12,2 22,0 0,7
Poteriostomum imparidentatum 11,0 7,3 0,2
Gyalocephalus capitatus 1,0 2,4 0,1
Ëè÷èíêè 4–5 ñòàäèé 2,7 – 0,4
Âèä
Ñðåäíåå êîëè÷åñòâî
íåìàòîä â îäíîé ïðîáå
ÝÈ, % Äîëÿ â ñîîáùåñòâå, %
íûé ìåòîä ñëåäóåò âíåñòè ìîäèôèêàöèè, ñâÿçàííûå ñ îñîáåííîñòÿìè ðàñïðåäå-
ëåíèÿ ýòèõ ïàðàçèòîâ â ïèùåâàðèòåëüíîì òðàêòå ëîøàäè è ÷óâñòâèòåëüíîñòüþ
ïàðàçèòîâ ê îïðåäåëåííûì ãðóïïàì àíòèãåëüìèíòíûõ ïðåïàðàòîâ.
Èç ïîëó÷åííûõ ðåçóëüòàòîâ ìîæíî çàêëþ÷èòü, ÷òî ìåòîä äèàãíîñòè÷åñêîé
äåãåëüìèíòèçàöèè ïîçâîëÿåò èññëåäîâàòü êèøå÷íûõ ïàðàçèòîâ ëîøàäåé in vivo.
Ïðè ýòîì ïîëó÷åííûå äàííûì ìåòîäîì ðåçóëüòàòû äîñòàòî÷íî äîñòîâåðíû è
ñðàâíèìû ñ ðåçóëüòàòàìè èññëåäîâàíèÿ ñîîáùåñòâà êèøå÷íûõ ïàðàçèòîâ òðàäè-
öèîííûìè ìåòîäàìè.
Âûâîäû
1. Ó ëîøàäåé èç òðåõ îáëàñòåé Óêðàèíû çàðåãèñòðèðîâàíî 25 âèäîâ êèøå÷-
íûõ íåìàòîä îòðÿäà Strongylida. Ïðè ýòîì ó îäíîé ëîøàäè îáíàðóæåíî îò 7 äî
20 âèäîâ ñòðîíãèëèä.
2. Äîìèíèðóþùèìè âèäàìè áûëè C. nassatus è C. catinatum, îíè çàðåãèñòðè-
ðîâàíû ó 100% ëîøàäåé è ñîñòàâèëè ñîîòâåòñòâåííî 36,5% è 17,5% îáùåãî êîëè-
÷åñòâà ñîáðàííûõ ñòðîíãèëèä. C. leptostomus, C. ashworthi, C. calicatus, C. longi-
bursatus è C. minutus îáíàðóæåíû ó 80% èññëåäîâàííûõ ëîøàäåé è ñîñòàâèëè
36,1% êîëè÷åñòâà ñîáðàííûõ ñòðîíãèëèä.
3. Ïîëó÷åííûå ðåçóëüòàòû ñîãëàñîâûâàþòñÿ ñ äàííûìè äðóãèõ àâòîðîâ ïî
ñòðóêòóðå ñîîáùåñòâà Strongylida ëîøàäåé Óêðàèíû.
4. Ìåòîä äèàãíîñòè÷åñêîé äåãåëüìèíòèçàöèè ïîçâîëÿåò òàêæå èññëåäîâàòü
ïîëîâîçðåëûå è ëè÷èíî÷íûå ñòàäèè P. equorum, O. equi, à òàêæå ëè÷èíîê Gaste-
rophilus spp.
Ïðîâåäåííîå èññëåäîâàíèå ÷àñòè÷íî ïðîôèíàíñèðîâàíî çà ñ÷åò ãðàíòà UP1–2423–KV–02 Ôîí-
äà ãðàæäàíñêèõ èññëåäîâàíèé è ðàçâèòèÿ ÑØÀ (U. S. Civilian Research and Development Foundation)
äëÿ ñòðàí áûâøåãî Ñîâåòñêîãî Ñîþçà.
Äâîéíîñ Ã. Ì. Ìàòåðèàëû ê èçó÷åíèþ ãåëüìèíòîôàóíû ëîøàäåé Óêðàèíû // Ïðîáëåìû ïàðàçèòîëî-
ãèè : Òð. VI íàó÷. êîíô. ÓÐÍÎÏ. — Êèåâ : Íàóê. äóìêà, 1969. — ×. 1. — Ñ. 87–89.
Äâîéíîñ Ã. Ì., Õàð÷åíêî Â. À. Ñòðîíãèëèäû äîìàøíèõ è äèêèõ ëîøàäåé. — Êèåâ : Íàóê. äóìêà,
1994. — 234 ñ.
Ëàáîðàòîðíûå ìåòîäû èññëåäîâàíèÿ â âåòåðèíàðèè. Ò. 1. — Ì. : Ãîñ. èçä-âî ñ.-õ. ëèò. 1953. — 588 ñ.
Borgsteede F. H. M., Dvojnos G. M., Kharchenko V. A. Benzimidazole resistance in cyathostomes in horses in
the Ukraine // Vet. Parasitology. — 1997. — 68, N 1–2. — P. 113–117.
Bucknell D., Hoste H., Gasser R. B., Beveridge I. The structure of the community of strongyloid nematodes
of domestic equids // J. Helminthology. — 1996. — 70, N 3. — P. 185–192.
Craig T. M. Anthelmintic resistance // Vet. Parasitology. — 1993. — 46, N 1–4. — P. 121–131.
Eydal M. Gastrointestinal parasites in horses in Iceland // J. Agricul. Research in Iceland. — 1983. — 15,
N 1–2. — P. 3–28.
Gawor J. J. The prevalence and abundance of internal parasites in working horses autopsied in Poland // Vet.
Parasitology. — 1995. — 58, N 1–2. — P. 99–108.
Herd R. P. Performing equine fecal egg counts // Vet. Medicine. — 1992. — 87. — P. 240–244.
Konigova A., Varady M., Corba J. The prevalence of equine gastrointestinal parasites in the Slovak Republic //
Helminthologia. — 2001. — 38, N 4. — P. 211–214.
Lichtenfels J. R. Helminths of Domestic Equids // Proc. Helm. Soc. Wash. — 1975. — 42. — P. 1–92.
Lyons E. T., Swerczek T. W., Tolliver S. C. et al. Prevalence of selected species of internal parasites in equids
at necropsy in central Kentucky (1995–1999) // Vet. Parasitology. — 2000. — 92, N 1. — P. 51–62.
Mfitilodze M. W., Hutchinson G. W. The site distribution of adult strongyle parasites in the large intestines of
horses in tropical Australia // Int. J. for Parasitology. — 1985. — 15, N 3. — P. 313–319.
Osterman Lind E., Eysker V., Nilsson O. et al. Expulsion of small strongyle nematodes (cyathostomin spp.)
following deworming of horses on a stud farm in Sweden // Vet. Parasitology. — 2003. — 115. —
P. 289–299.
Reinemeyer C. R., Smith S. A., Gabel A. A. et al. The prevalence and intensity of internal parasites of horses
in the USA // Vet. Parasitology. — 1984. — 15. — P. 75–83.
70 Ò. À. Êóçüìèíà, Â. À. Õàð÷åíêî, À. È. Ñòàðîâèð, Ã. Ì. Äâîéíîñ
|