Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе

Методом диференційної УФ-спектроскопії вивчені особливості впливу концентрації іонів Zn^2+ на перехід B-ДНК у металізовану форму у всій області температур існування подвійної спіралі (від 25 до 70 °С) у розчинах, які вміщують 0,01 М трис-буферу (pH 8,5), 0,005 М NaCl і перемінні концентрації ZnCl^2....

Повний опис

Збережено в:
Бібліографічні деталі
Дата:2011
Автори: Сорокин, В.А., Валеев, В.А., Усенко, Е.Л.
Формат: Стаття
Мова:Russian
Опубліковано: Видавничий дім "Академперіодика" НАН України 2011
Назва видання:Доповіді НАН України
Теми:
Онлайн доступ:http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/38560
Теги: Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
Назва журналу:Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
Цитувати:Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе / В.А. Сорокин, В.А. Валеев, Е.Л. Усенко // Доп. НАН України. — 2011. — № 8. — С. 170-176. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.

Репозитарії

Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
id irk-123456789-38560
record_format dspace
spelling irk-123456789-385602012-11-13T12:11:02Z Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе Сорокин, В.А. Валеев, В.А. Усенко, Е.Л. Біофізика Методом диференційної УФ-спектроскопії вивчені особливості впливу концентрації іонів Zn^2+ на перехід B-ДНК у металізовану форму у всій області температур існування подвійної спіралі (від 25 до 70 °С) у розчинах, які вміщують 0,01 М трис-буферу (pH 8,5), 0,005 М NaCl і перемінні концентрації ZnCl^2. Виявлено, що іони Zn^2+ індукують гіпохромізм всього спектра поглинання ДНК, найбільша величина якого у максимумі поглинання ДНК досягає 24%, що відповідає ступеню металізації [m]=100%. Остання реалізується тільки при нагріванні розчинів, які мають концентрацію [Zn^2+]≥2·10^−4 М. Вперше отримана фазова діаграма цинкового комплексу ДНК, що складається із областей з різним характером залежності [m] від температури і концентрації іонів Zn^2+. The method of differential UV-spectroscopy is applied to study peculiarities of the effects of Zn^2+ ion concentration on the B-DNA transition into the metallized form in the whole range of temperatures of the double helix existence (from 25 °С to 70 °С) in solutions containing 0.01 М Tris-buffer (pH 8.5), 0.005 М NaCl, and variable concentrations of ZnCl^2. It is revealed that Zn^2+ ions induce hypochromicity of the whole absorption spectrum of DNA the limit value of which in the DNA absorption maximum runs up to 24%, which corresponds to the metallization degree [m]=100%. The last is realized at the heating of solutions being of [Zn^2+]≥2·10^−4 М concentration. For the first time, the phase diagram has been obtained for the DNA-zinc complex, being composed of regions with different characters of the [m] dependence on the temperature and the Zn^2+ ion concentration. 2011 Article Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе / В.А. Сорокин, В.А. Валеев, Е.Л. Усенко // Доп. НАН України. — 2011. — № 8. — С. 170-176. — Бібліогр.: 15 назв. — рос. 1025-6415 http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/38560 535.343.3.577.323 ru Доповіді НАН України Видавничий дім "Академперіодика" НАН України
institution Digital Library of Periodicals of National Academy of Sciences of Ukraine
collection DSpace DC
language Russian
topic Біофізика
Біофізика
spellingShingle Біофізика
Біофізика
Сорокин, В.А.
Валеев, В.А.
Усенко, Е.Л.
Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе
Доповіді НАН України
description Методом диференційної УФ-спектроскопії вивчені особливості впливу концентрації іонів Zn^2+ на перехід B-ДНК у металізовану форму у всій області температур існування подвійної спіралі (від 25 до 70 °С) у розчинах, які вміщують 0,01 М трис-буферу (pH 8,5), 0,005 М NaCl і перемінні концентрації ZnCl^2. Виявлено, що іони Zn^2+ індукують гіпохромізм всього спектра поглинання ДНК, найбільша величина якого у максимумі поглинання ДНК досягає 24%, що відповідає ступеню металізації [m]=100%. Остання реалізується тільки при нагріванні розчинів, які мають концентрацію [Zn^2+]≥2·10^−4 М. Вперше отримана фазова діаграма цинкового комплексу ДНК, що складається із областей з різним характером залежності [m] від температури і концентрації іонів Zn^2+.
format Article
author Сорокин, В.А.
Валеев, В.А.
Усенко, Е.Л.
author_facet Сорокин, В.А.
Валеев, В.А.
Усенко, Е.Л.
author_sort Сорокин, В.А.
title Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе
title_short Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе
title_full Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе
title_fullStr Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе
title_full_unstemmed Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе
title_sort фазовая диаграмма цинкового комплекса днк в щелочном растворе
publisher Видавничий дім "Академперіодика" НАН України
publishDate 2011
topic_facet Біофізика
url http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/38560
citation_txt Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе / В.А. Сорокин, В.А. Валеев, Е.Л. Усенко // Доп. НАН України. — 2011. — № 8. — С. 170-176. — Бібліогр.: 15 назв. — рос.
series Доповіді НАН України
work_keys_str_mv AT sorokinva fazovaâdiagrammacinkovogokompleksadnkvŝeločnomrastvore
AT valeevva fazovaâdiagrammacinkovogokompleksadnkvŝeločnomrastvore
AT usenkoel fazovaâdiagrammacinkovogokompleksadnkvŝeločnomrastvore
first_indexed 2025-07-03T20:31:07Z
last_indexed 2025-07-03T20:31:07Z
_version_ 1836659158946938880
fulltext УДК 535.343.3.577.323 © 2011 В.А. Сорокин, В.А. Валеев, Е. Л. Усенко Фазовая диаграмма цинкового комплекса ДНК в щелочном растворе (Представлено членом-корреспондентом НАН Украины Д. Н. Говоруном) Методом диференцiйної УФ-спектроскопiї вивченi особливостi впливу концентрацiї iонiв Zn2+ на перехiд B-ДНК у металiзовану форму у всiй областi температур iснування по- двiйної спiралi (вiд 25 до 70 ◦С) у розчинах, якi вмiщують 0,01 М трис-буферу (pH 8,5), 0,005 М NaCl i перемiннi концентрацiї ZnCl2. Виявлено, що iони Zn2+ iндукують гiпо- хромiзм всього спектра поглинання ДНК, найбiльша величина якого у максимумi погли- нання ДНК досягає 24%, що вiдповiдає ступеню металiзацiї [m] = 100%. Остання реа- лiзується тiльки при нагрiваннi розчинiв, якi мають концентрацiю [Zn2+] > 2 · 10−4 М. Вперше отримана фазова дiаграма цинкового комплексу ДНК, що складається iз облас- тей з рiзним характером залежностi [m] вiд температури i концентрацiї iонiв Zn2+. В 1993 г. Ли с соавт. [1] обнаружили в щелочных растворах, содержавших хлориды цинка, никеля и кобальта, переход B-формы природных и синтетических ДНК разного нуклео- тидного состава в новое, металлизированное (m) состояние, обладающее рядом необычных свойств. Таких, например, как быстрый перенос электронов вдоль макромолекулы, харак- терный для металлической проводимости [2–4]. В дальнейшем ее наличие в жгутах молекул ДНК длиной 15 мкм было зарегистрировано в работе [5]. В сочетании со способностью природных и синтетических полинуклеотидов к самос- борке, основанной на фундаментальном принципе комплементарности, данные этих работ позволяют предполагать возможность использования металлокомплексов многоцепочечных полинуклеотидов для создания наноэлектронных устройств и биосенсоров [1, 3, 6–9]. Имен- но это обстоятельство стимулировало значительное количество экспериментальных и тео- ретических работ [1–10], посвященных исследованию различных (в том числе и термодина- мических: термостабильности [1, 4], теплоты [10] B → m-перехода) свойств металлизиро- ванных полинуклеотидов и особенностей переходов B-, A- ↔ m. Существенно важным параметром, влияющим на эффективность B → m-перехода, является температура раствора, поскольку, согласно существующим моделям, m-форма образуется путем замещения ионами Mt2+ иминопротонов AT - и GC-пар двойной спира- ли [1, 2, 9], требующего локальных раскрытий последних. В работах [1, 4, 10] получены определяющие долю металлизированных звеньев ДНК изотермы тушения флуоресценции этидиума, которые показали, что повышение температуры понижает необходимую для фор- мирования m-ДНК концентрацию ионов Mt2+ [10]. Этот результат естественен для предло- женной в [1, 2] модели образования m-ДНК, которая, по существу, является флуктуацион- ной. Однако в работах [1, 10] рассмотрен узкий интервал низких температур (0–37 ◦С). В связи с этим целью настоящей работы является получение фазовой диаграммы комп- лекса ДНК+Zn2+, т. е. измерение зависимости температур конформационных переходов от концентрации цинка во всей температурной области существования двойной спирали. Материалы. Натриевая соль ДНК спермы лосося ([GC] = 41%, молекулярный вес Mw = (4 ÷ 6) · 106 Да) (Serva, Germany); химически чистые соли ZnCl2 · 6H2O и NaCl (Ре- 170 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2011, №8 ахим., Россия). Буферы: какодилат натрия (pH 6,5) и трис (pH 8,5) (оба Serva, Germany). Все растворы ДНК содержали 0,01 М буфера и 0,005 М NaCl. Чтобы избежать образования гидроокисей при pH 8,5 (в том числе и нерастворимых), в качестве базового использовали раствор ZnCl2 в трижды дистиллированной воде (pH 6,65). Концентрацию ZnCl2 ([Zn2+]) определяли по весу и контролировали методом трилонометрического титрования. Разли- чие в значениях [Zn2+], определенных обоими методами, не превышало 2%. Необходимую концентрацию ZnCl2 получали добавлением в кювету с раствором ДНК в какодилатном или трис-буферах соответствующего количества базового раствора, имевшего концентра- цию 0,03 М Zn2+. При этом кислотность растворов ДНК в трисе сохраняла свое значение в пределах 0,025 ед. pH вплоть до 6 ·10−4 М Zn2+. Ошибка определения [Zn2+] при всех ука- занных процедурах не превышала 0,5 %. Концентрацию фосфора ДНК (Р), составлявшую (2±0,1)·10−5 М, определяли по коэффициенту молярной экстинкции (εm = 6600 М−1 ·см−1) в максимуме ее поглощения (νm = 38500 см−1). Ошибка определения кислотности растворов pH-метром “pH-340” (Россия) составляла ±0,025 ед. pH. Методы. Дифференциальная УФ-спектроскопия. Дифференциальные УФ-спе- ктры ∆A(ν) измеряли при комнатной температуре T0 = 25 ± 2 ◦С на спектрофотометре UV VIS (Carl Zeiss Jena — Germany), используя четырехкюветную схему [11, 12]. ДУФ-спе- ктры нормировали на концентрацию ДНК: ∆εT0(ν) = ∆AT0(ν)/P . При больших концент- рациях цинка ((2 ÷ 3) · 10−4 М) ДУФ-спектры показывали довольно сильную зависимость от времени инкубации, достигая равновесных формы и интенсивности через 30 мин пос- ле введения ZnCl2 в раствор ДНК. При дальнейшей инкубации в течение 150 мин изме- нение ∆εT0 не превышало 100 М−1 · см−1. Приведенные в работе ДУФ-спектры и значе- ния ∆εT0 при различных концентрациях ZnCl2 соответствуют инкубации растворов при T = T0 в течение 180 мин. Можно отметить, что в изученном диапазоне концентраций цин- ка ([Zn2+] 6 3 ·10−4 М) изменение оптической плотности растворов ДНК в длинноволновой части спектра (ν < 30000 см−1) не наблюдалось. Это свидетельствует об отсутствии обра- зования рассеивающих свет нерастворимых гидроокисей Zn(OH)2, так что концентрация ионов Zn2+ была близка к концентрации ZnCl2. Термическая денатурация. Температурные зависимости изменения поглощения ра- створов ДНК в отсутствие и присутствии ZnCl2 регистрировали на том же спектрофото- метре, что и ДУФ-спектры, при ν = νm = 38500 см−1. Эта регистрация осуществлялась по двухкюветной схеме [11]. После 180 мин предварительной выдержки при T = T0 эталон- ную кювету термостатировали при T = T0 ± 0,5 ◦С, а рабочую — медленно нагревали со скоростью 0,25 град/мин для того, чтобы максимальным образом обеспечить термодинами- ческое равновесие. Температуру растворов определяли с ошибкой, не превышающей 0,5 ◦С. Регистрация ДУФ-спектров, а также зависимостей ∆A(T ) в форме h(T ) и дифференци- рование последних по температуре осуществлялись присоединенным к спектрофотометру персональным компьютером, который рассчитывал температурную зависимость h(T ) = hT0 +∆h(T ) = { [∆εT0 +∆ε(T )] εm } νm , где hT0 = h при T = T0 (∆ε(T ) — изменение поглощения ДНК при нагревании). Результаты и обсуждение. Дифференциальные УФ-спектры. В В-форме наи- более стерически доступными и обладающими максимальным молекулярным электроста- тическим потенциалом являются атомы N7 пуриновых оснований, взаимодействие с кото- рыми катионов (в том числе и ионов Mt2+, имеющих d-электроны на внешних орбиталях) ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2011, №8 171 Рис. 1. Дифференциальные УФ-спектры ДНК, индуцированные ионами Zn2+ при комнатной температуре (T0 = 25 ± 2 ◦С): а — 9,9 · 10−5 М Zn2+; 1 — pH 6,5; 2 — pH 8,5; 3 — GMP + 6 · 10−3 М Ni2+ [13]; 4 — AMP + 2,5 · 10−3 М Ni2+ [11] (интенсивности этих спектров уменьшены в соответствии с относительным содержанием нуклеотидов в ДНК: [G] = 0,2; [A] = 0,3); б — 2 ·10−4 М Zn2+; 1 и 2 — то же, что и на рис. 1, а надежно зарегистрировано самыми различными методами [11–13]. Это взаимодействие при- водит к изменению энергии электронных переходов в азотистых основаниях и, как следст- вие, к сдвигу их полос поглощения, индуцирующему дифференциальные спектры, форма которых определяется не столько электронной структурой катионов, сколько природой свя- зывающих их атомов азотистых оснований [11–13]. Как видно из рис. 1, при pH 6,5 интенсивности ДУФ-спектров ДНК, индуцированных ионами Zn2+, очень малы и превышают ошибку измерения ∆ε (100 М−1 · см−1) только при 2 · 10−4 М Zn2+. Тем не менее, наблюдаемые положительная и отрицательная состав- ляющие на спектре 1 рис. 1, б свидетельствует о наличии, хотя и слабого, внутрисферного взаимодействия ионов Zn2+ с азотистыми основаниями ДНК. Можно сравнить ДУФ-спектр, индуцированный 9,9 · 10−5 М Zn2+ при pH 8,5 (рис. 1, а) с полученными ранее в нейтральных растворах комплексов GMP и АМР с ионами Ni2+, поскольку таковые в присутствии ионов Zn2+ в литературе отсутствуют. Однако взаимо- действие ионов Zn2+ и Ni2+ с ДНК должно быть подобным, так как основное отличие между этими ионами — разное число электронов на внешних d-орбиталях. Во всяком слу- чае оба иона координируют N7 пуриновых мономеров [14]. Таким образом, несмотря на малую интенсивность ДУФ-спектров металлокомплексов, согласие между спектрами 3, 4 и спектром 2 (рис. 1, а) позволяет предположить взаимодействие ионов Zn2+ с теми же атомами оснований и при pH 8,5. Однако повышение концентрации цинка индуцирует ги- похромизм всего спектра поглощения ДНК (рис. 1, б ). При этом наиболее интенсивный минимум на спектре 2 расположен при ν = 39400 см−1, т. е. вблизи положения максимума поглощения ДНК. Как видно из рис. 2, концентрационные зависимости ∆εT0 , полученные при pH 6,5 (a-b) и pH 8,5 (a-c-d), резко отличаются. Поскольку зависимость a-b обусловлена координацией ионов Zn2+ с N7 пуринов ДНК, наиболее вероятной причиной дополнительного гипохромиз- ма ее поглощения в растворе, содержащем ZnCl2, при изменении pH от 6,5 до 8,5 является переход полинуклеотида из B- в m-форму, обнаруженный в присутствии ионов Zn2+ в мно- гочисленных работах [1–4, 5, 7, 10]. В этом случае общая для кривых a-b и а-с точка a 172 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2011, №8 Рис. 2. Концентрационная зависимость изменения поглощения ДНК при T = T0 и ν = 38500 см−1: а-b — pH 6,5; a-c-d — pH 8,5; [Zn2+]кр = (9,4± 0,2) · 10−5 М; [m] — доля звеньев B-ДНК, перешедших в m-форму определяет критическую концентрацию ионов Zn2+ ([Zn2+]кр), меньше которой в изучен- ных ионных условиях и времени инкубации m-форма не образуется. На участке c-d (рис. 2) |∆εT0 | сохраняет свое максимальное значение (∼800 М−1 ·см−1), что свидетельствует о дос- тижении равновесного уровня степени металлизации ДНК ([m]). С другой стороны, согла- сно данным флуоресцентного анализа, в сопоставимых ионных условиях, при комнатной температуре и pH 8,4–8,5 в диапазоне концентраций (2÷ 3) · 10−4 М Zn2+ в m-форму пере- ходит 50% звеньев ДНК различного нуклеотидного состава, включая ДНК тимуса теленка ([GC] = 42%) [4]. Таким образом, можно считать, что гипохромизм ∆εT0 = − 800 М−1 · см−1 (hT0 =−0,12) соответствует [m] = 50%, а кривая a-c-d представляет собой зависимость [m] от концент- рации ионов Zn2+. Температурные зависимости поглощения ДНК. Зависимости h(T ) при pH 8,5 (рис. 3, a) в отсутствие цинка и при концентрациях [Zn2+] < [Zn2+]кр = 9,4 · 10−5 М имеют обычную форму, характерную для таковых в нейтральных растворах. В этом случае при нагревании наблюдается только гиперхромизм поглощения (h > 0), обусловленный разру- шением двойной спирали ДНК. Однако температурные зависимости h и их производных по температуре при [Zn2+] > [Zn2+]кр имеют совершенно иную форму. Различие между за- висимостями h(T ), наблюдаемыми при pH 6,5 и pH 8,5, особенно четко видно при больших концентрациях цинка. Так, при 3·10−4 М Zn2+ вместо единственного кооперативного возра- стания h при pH 6,5, наблюдаемого при T > 60 ◦C, в случае pH 8,5 нагревание индуцирует в диапазоне температур от T0 до Ts2 гипохромизм поглощения ДНК (h < 0), дополнитель- ный по отношению к наблюдаемому при T = T0 (рис. 3, а). В рамках сделанного выше предположения этот гипохромизм обусловлен возрастанием степени металлизации ДНК при повышении температуры, что вполне согласуется с существующими моделями образо- вания m-формы [1, 2, 9]. Из полученных данных следует, что нагревание приводит к тому, что отношение hm/hT0 = 2±0,3 при всех значениях [Zn2+] > [Zn2+]кр (hm — максимальный гипохромизм, достигаемый при нагревании). Этот результат отлично согласуется со сде- ланным выше предположением о том, что значение h = −0,12 (∆ε = −800 М−1 · см−1) соот- ветствует переходу в m-форму 50% звеньев ДНК и, таким образом, при [Zn2+] > 2 · 10−4 М нагревание приводит к полному переходу B-ДНК в металлизированную форму. ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2011, №8 173 Рис. 3. Температурные зависимости изменения поглощения ДНК (а) и их производных по температуре (б ) при pH 8,5 и ν = 38500 см−1: AT0 — оптическое поглощение ДНК при T = T0; 0 — [Zn2+] = 0; 1 — 6,5 · 10−5 М; 2 — 1,5 · 10−4 М; 3 — 3 · 10−4 М Zn2+; 4 — кривая плавления ДНК в какодилатном буфере (pH 6,5) в присутствии 3 · 10−4 М Zn2+; Ts1 — температура, при которой происходит резкое увеличение скорости металлизации ДНК; Tf1 — температура окончания перехода в m-форму; Ts2 и Tf2 — соответственно температура начала и окончания разрушения двойной спирали ДНК; [m] — то же, что и на рис. 2 Интенсивность перехода B → m зависит не только от концентрации цинка, но и от температуры. Так, при нагревании от T = T0 до T = Ts1 (точки n на кривых 2, 3 и 4 рис. 3, а) величина производной β(T ) = d[m]/dT составляет 0,4–0,8%/град (рис. 3, б ). Однако при T > Ts1 происходит резкое возрастание этой производной, максимальное зна- чение которой увеличивается на порядок (рис. 3, б ). Последнее позволяет предположить, что при T > Ts1 меняется характер металлизации ДНК: от флуктуационного к коопера- тивному, обусловленному появлением притяжения между металлизированными звеньями ДНК [1]. И, наконец, последнее замечание. Хотя условием металлизации ДНК является повыше- ние pH, необходимое для того, чтобы приблизить кислотность раствора к рKa депро- тонирования иминопротонов, принадлежащих N1 гуанина и N3 тимина соответственно в GC- и АТ-парах, значения рKa для этих атомов нуклеотидов (9,9–10 для ТМР и 9,5–9,7 для dGMP) существенно больше pHm 8,4–8,5 (pHm = pH, при которой в m-форму пере- ходит 50% звеньев ДНК) [4]. Причина такого различия, по-видимому, состоит в том, что, как показано методом ПМР-спектроскопии [15], ионы Mt2+, образующие координационные связи с атомами N7 пуринов, понижают константу ионизации N1: связывание ионов Zn2+ и Cu2+ с N7 нуклеозидов Ado, Ino и Guo уменьшает рKa атома N1 на 0,7–1,1 ед., так что наблюдаемые значения pHm действительно оказываются близкими к величинам рKa депро- 174 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2011, №8 Рис. 4. Фазовая диаграмма комплекса ДНК с ионами Zn2+ при pH 8,5: B и m — области существования двухспиральной ДНК, соответственно, только в B- и m-формах; С — область существования однонитевых ДНК; γ — область, в которой нагревание сдвигает равновесие между B- и m-формами в сторону увеличения доли последней. В заштрихованной ее части (γ′) происходит резкое увеличение скорости металлизации (рис. 3, б ); ρ — область, в которой нагревание не изменяет соотношения между B- и m-фазами тонирования пуринов. Таким образом, не только повышение pH, но и взаимодействие ионов Mt2+ с N7 пуринов способствует реализации B → m-перехода в природной ДНК при pH 8–9. Форма зависимостей h(T ) при pH 8,5 позволяет построить диграмму фазового равнове- сия между B- и m-формами ДНК (рис. 4). Из нее следует, что двойная спираль сохраня- ется во всей изученной области концентраций цинка ниже кривой n-e-L-a, а выше кривой v-i-k-t ДНК находится в однонитевой конформации. Слева от прямой e-f существует только B-форма, а в области, ограниченной линиями a-L, L-r и r-s — только m-форма. В остальной части фазовой диаграммы (области γ и ρ) B- и m-формы двухспиральной ДНК находятся в термодинамическом равновесии друг с другом. В области γ при заданной концентрации цинка и повышении температуры доля звеньев ДНК, находящихся в m-форме, возрастает, достигая максимального значения при температурах, соответствующих кривой e-r-s (Tf1 на рис. 3, a). При повышении концентрации ZnCl2 эта температура быстро понижается и со- ставляет при 3 · 10−4 М Zn2+ всего 35 ◦С, тогда как при 10−4 М Zn2+ Tf1 ∼ 68 ◦С. Однако в этом случае изменение [m] при нагревании находится в пределах ошибки ее определе- ния. В области γ существует участок, ограниченный кривыми e-r-s и e-x (Ts1 на рис. 3, a), в котором процесс металлизации ДНК идет гораздо быстрее, чем при T < Ts1. Как уже отмечалось выше, эта область соответствует, предположительно, изменению характера ме- таллизации ДНК. В отличие от области γ, в области ρ (рис. 4) нагревание не изменяет соотношения между количеством звеньев, находящихся в обеих формах, вплоть до дости- жения температур, при которых начинается разрушение двойной спирали (кривая e-L-a, соответствующая Ts2 на рис. 3, a), заканчивающееся на кривой i-k-t, соответствующей Tf2 на рис. 3, a. Основные результаты. 1. Образование m-формы сопровождается гипохромизмом спе- ктра поглощения ДНК. Установлена количественная связь между его величиной и степенью металлизации двойной спирали ([m]). 2. Существует температура, выше которой скорость металлизации ДНК увеличивается в несколько раз, однако дальнейшее нагревание приво- дит к равновесному для каждой концентрации значению [m], которое достигает 100% лишь при [Zn2+] > 2 · 10−4 М. ISSN 1025-6415 Доповiдi Нацiональної академiї наук України, 2011, №8 175 1. Lee J. S., Latimer L. J. P., Reid R. S. A cooperative conformational change in duplex DNA induced by Zn2+ and other divalent metal ions // Biochem. Cell Biol. – 1993. – 71. – P. 162–168. 2. Aich P., Labiuk S. L., Tari L.W. et al. M-DNA: A complex between divalent metal ions and DNA which behaves as a molecular wire // J. Mol. Biol. – 1999. – 294. – P. 477–485. 3. Wettig Sh. D., Li C.-Z., Long Y.-T. et al. M-DNA: A self-assembling molecular wire nanoelectronics and biosensing // Analytical Sciences. – 2003. – 19. – P. 23–26. 4. Wood D.O., Dinsmore M. J., Bare G.A., Lee J. S. M-DNA is stabilized in GC tracts or by incorporation of 5-fluorouracil // Nucl. Acids Res. – 2002. – 30. – P. 2244–2250. 5. Rakitin A., Aich P., Papadoupoulos C. et al. Metallic conduction through engineered DNA: DNA nano- electronic building blocks // Phys. Rev. Let. – 2001. – 86, No 6. – P. 3670–3673. 6. Delaney S.., Barton J.K. Long-range DNA charge transport // J. Org. Chem. – 2003. – 68, No 17. – P. 6475–6483. 7. Lindegaard D., Wood D.O., Wengel J., Lee J. S. Electron injection from the side of an M-DNA duplex // J. Biol. Inorg. Chem. – 2006. – 11, No 1. – P. 82–87. 8. Bhalla V., Bajpai R. P., Bharadwaj L.M. DNA electronics // Europ. Molec. Biol. Organ. Rep. – 2003. – 4, No 5. – P. 442–445. 9. Sanz Miguel P. J., Amo-Ochoa P., Castillo O. et al. Supermolecular chemistry of Metal-Nucleobase comp- lexes // Metal Complex-DNA Interactions. Eds. N. Hadjiliadis and E. Sletten. – New York: Wiley, 2009. – Ch. 4. – P. 95–132. 10. Wettig Sh. D., Wood D.O., Lee J. S. Thermodynamic investigation of M-DNA: a novel metal ion-DNA complex // J. Inorg. Biochem. – 2003. – 94. – P. 94–99. 11. Sorokin V.A., Valeev V.A., Gladchenko G.O. et al. Ni2+ ion effect on conformations of single-, double- and three-stranded homopolynucleotides containing adenine and uracil // Macromol. Biosci. – 2001. – 1. – P. 191–203. 12. Sorokin V.A., Valeev V.A., Gladchenko G.O. et al. Interaction of divalent metal ions with four-stranded polyriboinosinic acid // Biophysics. – 2000. – 45. – P. 749–755. 13. Sorokin V.A., Valeev V.A., Gladchenko G.O. et al. The nature of differences in binding of 3d transition metal ions to guanosine – 5′-monophosphate // Ibid. – 1999. – 44. – P. 38–44. 14. Aoki K. Nucleosides, nucleotides and metal ions // Metalloproteins: Chemical properties and biological effects. Eds. S. Otsuka, T. Yamanaka. – Amsterdam; Oxford; New York; Tokio: Elsevier, 1988. – Vol. 8, ch. 13. – P. 457–490. 15. Kim S.-H., Martin R.B. Binding sites and stabilities of transition metal ions with nucleosides and related ligands // Inorg. Chim. Acta. – 1984. – 91. – P. 19–24. Поступило в редакцию 29.11.2010Физико-технический институт низких температур им. Б.И. Веркина НАН Украины, Харьков V.A. Sorokin, V. A. Valeev, E. L. Usenko Phase diagram of a DNA-zinc complex in alkaline solution The method of differential UV-spectroscopy is applied to study peculiarities of the effects of Zn2+ ion concentration on the B-DNA transition into the metallized form in the whole range of temperatures of the double helix existence (from 25 ◦С to 70 ◦С) in solutions containing 0.01 М Tris-buffer (pH 8.5), 0.005 М NaCl, and variable concentrations of ZnCl2. It is revealed that Zn2+ ions induce hypochromicity of the whole absorption spectrum of DNA the limit value of which in the DNA absorption maximum runs up to 24%, which corresponds to the metallization degree [m] = 100%. The last is realized at the heating of solutions being of [Zn2+] > 2 · 10−4 М concentration. For the first time, the phase diagram has been obtained for the DNA-zinc complex, being composed of regions with different characters of the [m] dependence on the temperature and the Zn2+ ion concentration. 176 ISSN 1025-6415 Reports of the National Academy of Sciences of Ukraine, 2011, №8