ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO

ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO

Background. The development of human breast cancer (BC) is known to be closely related to disturbances in the mammary gland microbiota. Bacteria of the genus Bifidobacterium are an important component of normal breast microbiota and exert antitumor activity. The molecular-biological mechanisms of in...

Повний опис

Збережено в:
Бібліографічні деталі
Дата:2023
Автори: Kozak, T., Lykhova, O., Serhiichuk, T., Bezdieniezhnykh, N., Chekhun, V.
Формат: Стаття
Мова:English
Опубліковано: PH Akademperiodyka 2023
Теми:
рак молочної залози
Bifi bacterium
мікробіота
крива росту
рН средовища
культура клітин
Онлайн доступ:https://exp-oncology.com.ua/index.php/Exp/article/view/2023-4-504
Теги: Додати тег
Немає тегів, Будьте першим, хто поставить тег для цього запису!
Назва журналу:Experimental Oncology

Репозитарії

Experimental Oncology
id oai:ojs2.ex.aqua-time.com.ua:article-356
record_format ojs
institution Experimental Oncology
baseUrl_str
datestamp_date 2025-04-30T18:43:26Z
collection OJS
language English
topic рак молочної залози
Bifi bacterium
мікробіота
крива росту
рН средовища
культура клітин
spellingShingle рак молочної залози
Bifi bacterium
мікробіота
крива росту
рН средовища
культура клітин
Kozak, T.
Lykhova, O.
Serhiichuk, T.
Bezdieniezhnykh, N.
Chekhun, V.
ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO
topic_facet рак молочної залози
Bifi bacterium
мікробіота
крива росту
рН средовища
культура клітин
breast cancer
Bifidobacterium
microbiota
growth curve
pH
cell culture
format Article
author Kozak, T.
Lykhova, O.
Serhiichuk, T.
Bezdieniezhnykh, N.
Chekhun, V.
author_facet Kozak, T.
Lykhova, O.
Serhiichuk, T.
Bezdieniezhnykh, N.
Chekhun, V.
author_sort Kozak, T.
title ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO
title_short ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO
title_full ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO
title_fullStr ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO
title_full_unstemmed ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO
title_sort оптимізація експериментальних модельних систем для оцінки взаємовпливу bifidobacterium animalis та клітин раку молочної залози людини in vitro
title_alt OPTIMIZATION OF EXPERIMENTAL MODEL SYSTEMS FOR EVALUATING RECIPROCAL INFLUENCE OF BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS AND HUMAN BREAST CANCER CELLS IN VITRO
description Background. The development of human breast cancer (BC) is known to be closely related to disturbances in the mammary gland microbiota. Bacteria of the genus Bifidobacterium are an important component of normal breast microbiota and exert antitumor activity. The molecular-biological mechanisms of interaction between BC cells and microbiota members remain poorly studied yet. The aim of this study was to develop and optimize an experimental model system for the co-cultivation of BC cells with Bifidobacterium animalis in vitro. Materials and Methods. Human ВС cells of the MCF-7, T47D, and MDA-MB-231 lines, as well as live and heat-inactivated bacteria of Bifidobacterium animalis subsp. lactis (B. animalis) were used as research objects. The growth kinetics and viability of B. animalis in the presence of different ВС cell lines and without them were determined by both the turbidimetry method and seeding on an elective nutrient medium. Glucose consumption and lactate production by bifidobacteria were assessed by biochemical methods. The viability of BC cells was determined by a standard colorimetric method. Results. The growth kinetics of B. animalis in the complete DMEM nutrient medium showed standard patterns. The indicators of glucose consumption and lactate production of B. animalis confirm its physiological metabolic activity under the growth conditions. The presence of BC cells in the model system did not affect the duration of the growth phases of the B. animalis cells’ population but contributed to the increase in their counts. A significant decrease in the number of live BC cells of all studied lines was observed only after 48 h of co-cultivation with live B. animalis. To achieve similar suppression of the BC cell viability, 10—30-fold higher counts of heatinactivated bacteria were required compared to live ones. Conclusions. The optimal conditions for co-cultivation of human BC cells and living B. animalis cells in vitro have been identified.
publisher PH Akademperiodyka
publishDate 2023
url https://exp-oncology.com.ua/index.php/Exp/article/view/2023-4-504
work_keys_str_mv AT kozakt optimizationofexperimentalmodelsystemsforevaluatingreciprocalinfluenceofbifidobacteriumanimalisandhumanbreastcancercellsinvitro
AT lykhovao optimizationofexperimentalmodelsystemsforevaluatingreciprocalinfluenceofbifidobacteriumanimalisandhumanbreastcancercellsinvitro
AT serhiichukt optimizationofexperimentalmodelsystemsforevaluatingreciprocalinfluenceofbifidobacteriumanimalisandhumanbreastcancercellsinvitro
AT bezdieniezhnykhn optimizationofexperimentalmodelsystemsforevaluatingreciprocalinfluenceofbifidobacteriumanimalisandhumanbreastcancercellsinvitro
AT chekhunv optimizationofexperimentalmodelsystemsforevaluatingreciprocalinfluenceofbifidobacteriumanimalisandhumanbreastcancercellsinvitro
AT kozakt optimízacíâeksperimentalʹnihmodelʹnihsistemdlâocínkivzaêmovplivubifidobacteriumanimalistaklítinrakumoločnoízalozilûdiniinvitro
AT lykhovao optimízacíâeksperimentalʹnihmodelʹnihsistemdlâocínkivzaêmovplivubifidobacteriumanimalistaklítinrakumoločnoízalozilûdiniinvitro
AT serhiichukt optimízacíâeksperimentalʹnihmodelʹnihsistemdlâocínkivzaêmovplivubifidobacteriumanimalistaklítinrakumoločnoízalozilûdiniinvitro
AT bezdieniezhnykhn optimízacíâeksperimentalʹnihmodelʹnihsistemdlâocínkivzaêmovplivubifidobacteriumanimalistaklítinrakumoločnoízalozilûdiniinvitro
AT chekhunv optimízacíâeksperimentalʹnihmodelʹnihsistemdlâocínkivzaêmovplivubifidobacteriumanimalistaklítinrakumoločnoízalozilûdiniinvitro
first_indexed 2025-07-17T12:18:02Z
last_indexed 2025-07-17T12:18:02Z
_version_ 1837896494953267200
spelling oai:ojs2.ex.aqua-time.com.ua:article-3562025-04-30T18:43:26Z OPTIMIZATION OF EXPERIMENTAL MODEL SYSTEMS FOR EVALUATING RECIPROCAL INFLUENCE OF BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS AND HUMAN BREAST CANCER CELLS IN VITRO ОПТИМІЗАЦІЯ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИХ МОДЕЛЬНИХ СИСТЕМ ДЛЯ ОЦІНКИ ВЗАЄМОВПЛИВУ BIFIDOBACTERIUM ANIMALIS ТА КЛІТИН РАКУ МОЛОЧНОЇ ЗАЛОЗИ ЛЮДИНИ IN VITRO Kozak, T. Lykhova, O. Serhiichuk, T. Bezdieniezhnykh, N. Chekhun, V. рак молочної залози, Bifi bacterium, мікробіота, крива росту, рН средовища, культура клітин breast cancer, Bifidobacterium, microbiota, growth curve, pH, cell culture Background. The development of human breast cancer (BC) is known to be closely related to disturbances in the mammary gland microbiota. Bacteria of the genus Bifidobacterium are an important component of normal breast microbiota and exert antitumor activity. The molecular-biological mechanisms of interaction between BC cells and microbiota members remain poorly studied yet. The aim of this study was to develop and optimize an experimental model system for the co-cultivation of BC cells with Bifidobacterium animalis in vitro. Materials and Methods. Human ВС cells of the MCF-7, T47D, and MDA-MB-231 lines, as well as live and heat-inactivated bacteria of Bifidobacterium animalis subsp. lactis (B. animalis) were used as research objects. The growth kinetics and viability of B. animalis in the presence of different ВС cell lines and without them were determined by both the turbidimetry method and seeding on an elective nutrient medium. Glucose consumption and lactate production by bifidobacteria were assessed by biochemical methods. The viability of BC cells was determined by a standard colorimetric method. Results. The growth kinetics of B. animalis in the complete DMEM nutrient medium showed standard patterns. The indicators of glucose consumption and lactate production of B. animalis confirm its physiological metabolic activity under the growth conditions. The presence of BC cells in the model system did not affect the duration of the growth phases of the B. animalis cells’ population but contributed to the increase in their counts. A significant decrease in the number of live BC cells of all studied lines was observed only after 48 h of co-cultivation with live B. animalis. To achieve similar suppression of the BC cell viability, 10—30-fold higher counts of heatinactivated bacteria were required compared to live ones. Conclusions. The optimal conditions for co-cultivation of human BC cells and living B. animalis cells in vitro have been identified. Стан питання. Відомо, що розвиток раку молочної залози (РМЗ) людини тісно пов’язаний з порушеннями нормального видового складу мікробіоти молочної залози. Бактерії роду Bifidobacterium є важливим компонентом нормальної мікробіоти грудей і володіють протипухлинною активністю. Молекулярно-біологічні механізми взаємовпливу клітин РМЗ і представників мікробіоти ще остаточно не з’ясовані. Метою цього дослідження було розробити та оптимізувати експериментальну модельну систему культивування клітин РМЗ з Bifidobacterium animalis in vitro. Матеріали та методи. Об'єктами дослідження були РМЗ клітини людини ліній MCF-7, T47D та MDA-MB-231, а також живі та інактивовані високою температурою бактерії виду Bifidobacterium animalis subsp. lactis (B. animalis). Кінетику росту та життєздатність B. animalis у присутності різних ліній клітин РМЗ людини та без них визначали методом турбідиметрії (OD600) та паралельним висівом на елективне поживне середовище. Споживання глюкози і продукцію лактату біфідобактеріями оцінювали біохімічними методами. Життєздатність клітин РМЗ визначали стандартним колориметричним методом. Результати. Кінетика росту B. animalis у повному поживному середовищі DMEM відповідала стандартним параметрам кривої росту бактерій. Показники споживання глюкози і продукції лактату B. animalis підтверджують їхню фізіологічну метаболічну активність за досліджених умов росту. Присутність клітин РМЗ в модельній системі не впливала на тривалість фаз росту популяції клітин B. animalis, але сприяла збільшенню їх кількості. Cтатистично достовірне зменшення кількості живих клітин РМЗ усіх досліджених ліній спостерігали лише через 48 годин співкультивування з живими B. animalis. Для досягнення подібного ефекту пригнічення життєздатності пухлинних клітин необхідне 10—30 кратне збільшення кількості інактивованих високою температурою бактерій у порівнянні з живими. Висновки. Ідентифіковано найбільш оптимальні умови співкультивування клітин РМЗ людини та живих клітин B. animalis in vitro. PH Akademperiodyka 2023-12-12 Article Article application/pdf https://exp-oncology.com.ua/index.php/Exp/article/view/2023-4-504 10.15407/exp-oncology.2023.04.504 Experimental Oncology; Vol. 45 No. 4 (2023): Experimental Oncology; 504-514 Експериментальна онкологія; Том 45 № 4 (2023): Експериментальна онкологія; 504-514 2312-8852 1812-9269 10.15407/exp-oncology.2023.04 en https://exp-oncology.com.ua/index.php/Exp/article/view/2023-4-504/2023-4-504 Copyright (c) 2024 Experimental Oncology https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

Схожі ресурси